1、样品制备：

   收集外泌体样品：收集细胞培养上清液、生物体液（如血浆、尿液等）或组织液体（如脑脊液等），其中包含外泌体。

   预处理：通常需要对样品进行初步处理，如离心去除细胞碎片和大颗粒物质。
电镜固定：

   固定样品：使用适当的固定剂（如戊二醛、冷冻固定等）将外泌体固定在其原来的状态中，以保持其形态和结构。

   洗涤：用缓冲液洗涤样品，以去除过剩的固定剂。

2、脱水和浸透：

   脱水：在一系列浓度递增的乙醇溶液中，逐步将样品中的水分脱除，以使样品适应后续的树脂浸透。

   浸透：使用合适的树脂（如Epon、Araldite等）浸透样品，使其在固化后具有适合电镜观察的硬度和清晰度。

3、树脂包埋：

   预埋：将浸透后的样品置于埋脂盒中，加入适量的树脂，并根据需要进行定向。

   固化：根据树脂的不同，采用适当的温度和时间进行固化，使样品坚硬并固定在树脂块中。

4、超微切片：

   准备超薄切片：使用超薄切片机，将树脂块切割成约60-90纳米厚度的超薄切片。

   收集切片：将切片收集在铜或金网格上，以便后续的电镜观察。

5、电镜观察：

   双重染色：通常首先使用重金属盐（如铀酸和铅酞）对切片进行双重染色，以增加对比度。

   电镜观察：将样品放置在透射电镜中，利用电子束通过样品，观察外泌体的形态和内部结构。

   拍摄图像：使用透射电子显微镜（TEM）或扫描电子显微镜（SEM）拍摄外泌体的高分辨率图像。

   外泌体电镜观察是一项复杂的技术，需要在专业实验室中进行。实验条件和步骤可能会因实验目的和设备不同而有所变化。为了获得高质量的观察结果，建议在进行外泌体电镜观察时咨询专业人士或参考相关文献。