核酸提取仪的使用注意事项：

1、仪器的安装环境：正常的大气压(海拔高度应该低于3000m)、温度20-35℃、典型使用温度25℃、相对湿度10%-80%、畅通流入的空气为35℃或以下。

2、避免将仪器放置在靠近热源的地方，如电暖炉；同时为防止电子元件的短路，应避免水或者其他液体溅入其中。

3、进风口和排风口均位于仪器背面，同时避免灰尘或纤维在进风口聚集，保持风道的畅通。

4、离其他竖直面至少10cm。

5、仪器接地：为了避免触电事故，仪器的输入电源线须接地。

6、远离带电电路：操作人员不得擅自拆解仪器，更换元件或进行机内调节须有持证的专业维修人员完成，不要在接通电源的情况下更换元件。

1.临床意义：核酸提取是进行核酸检测的第一步，采用以磁珠法为基础的核酸自动化提取方法， 核酸得率高、具有较宽的检测范围、定量准确、操作简单，做为实验室的核酸提取方法，并可应用于临床诊断。

2.实验原理：利用硅磁法提取核酸的原理，硅胶包被的磁珠，在一定条件下对核 酸具有很强的亲和力。而当条件发生变化时，磁珠释放核酸，从而达到快速分离纯化核酸 的目的。提取的核酸得率高、纯度高、质量稳定。

3.样本准备  血清—采集 2mL 静脉血，注入无菌的干燥采血管，禁止使用含有肝素钠或其他抗凝剂 的采血管，室温（20~25℃）放置 30~60 分钟，血液样本可自发凝集析出血清，或使用水 平离心机，3000r/min 离心 5min；吸取上层血清，转移至无菌无 RNase 离心管内保存。 血浆—采集 2mL 静脉血，注入含 EDTA 或枸橼酸钠抗凝剂的采血管，立即轻摇采血管 混合 5~10 次，使抗凝剂与静脉血充分混匀，5~10 分钟后即可分离出血浆，转移至无菌 无 RNase 离心管内保存。 淋巴液、尿囊液、唾液、口腔拭子、无细胞体液、细胞培养上清液等样本的采 集参考常见医疗样本采集方式，保存于无菌无 RNase 离心管内待提取。 非液体状态含病毒标本——可液化后以液体标本形式使用本试剂盒进行提取。 样本保存和运送：经上述处理后的待测样本可立即用于检测，或-20±5℃保存(3 个月)， 长期保存请置于-70℃以下。应避免反复冻融。标本运送采用泡沫箱加冰密封等方式进行运输。

4.试剂  试剂为山东博弘基因科技有限公司提供的核酸提取试剂盒贰（磁珠法），包括试剂板 1、试剂板 2、试剂板 3、试剂板 4、裂解液 2 和搅拌套。

5.校准  无

6.质控  请参考核酸检测试剂盒说明书。

7.仪器设置  

7.1 开机:打开仪器的电源开关，仪器开始初始化，初始化完毕说明仪器可正常使用。

7.2 从试剂盒中取出 4 块试剂板，颠倒数次使磁珠重悬均匀。使用前应轻甩或快速离心以 避免试剂沾膜。小心撕去铝箔封口膜，防止液体溅出。按以下操作加入样品。 a. 取待测样本 200ul 加入到试剂板 1 中，吸打混匀 1 次，加入 20ul 裂解液 2 。 注：待测样本加入试剂板 1 前应充分混匀；裂解液 2 加入试剂板 1 前应充分混匀。 b. 将 4 块试剂板放入提取仪，确保 4 块试剂板放置的方向一致。 注：试剂板1放入板位1，试剂板2放入板位2，试剂板3放入板位3，试剂4放入板位5。c.将搅拌套插入搅拌套架。 d.将实验舱门关上。

7.3 运行文件 在主界面轻触〈程序运行〉，进入程序运行界面。选择所要运行的程序后，点击〈运 行〉，系统提示是否插入磁套，确认插入磁套后，点击〈是〉，仪器将按设定好的程序自 动运行，在一个程序文件正常运行完后，机器显示屏显示“程序运行结束”。

7.4 取下试剂板，开启紫外灯，设置紫外灯运行时间，点击〈确定〉，开始紫外消毒。 7.5试剂板4中便是提取纯化的核酸，按顺序吸出已经提纯好的核酸，可用于下游的实验。

8.正常参考范围  无

9.安全措施及警告

9.1 仪器在初次使用时，请务必先打开舱门，把实验舱内部的珍珠棉拿掉，再通电进 行实验。

9.2检查仪器和电源是否完好，确认完好后再通电开机。

9.3将试剂板放入实验舱中，将搅拌套推入到位，并认真检查是否到位，若未检查， 将有可能引起仪器异常，影响实验结果。

9.4 关闭实验舱安全门，编辑设置或直接选择要运行的程序文件，按开始运行。

9.5在程序运行过程中，若无异常或实验需要，实验人员请勿打开实验舱安全门，若 需要打开，请先暂停运行程序。

9.6仪器使用时请保证仪器四周通风。

9.7请不要在电压不稳、过高、过低时使用仪器。

9.8保持实验舱内环境较为干燥，无水渍等物。