Anipill®核心体温胶囊是一款可连续监测、记录并无线传输核心体温信号的微型胶囊。

适用动物及使用方式：小动物（大小鼠）可进行皮下或腹腔植入；中大型动物（比格犬、兔子、猪等）可选择皮下或腹腔植入，也可经口腔摄入进入体内，通过胃、肠道，最后由排出。使用简单方便，广泛用于小动物以及中大型动物的核心体温监测。

ANIMALS MONITORING的动物核心体温胶囊包括：Anipill胶囊和Anilogger检测仪。

Anipill胶囊用于植入（或吞服入）动物体内，采集动物的核心体温；胶囊通过无线信号传输，将采集到的体温信息传输给Anilogger监测仪，进行显示和读取，是款式高精度的核心体温采集设备。

应用于体温调节研究、感染学、生物节律分析、动物休眠、免疫和疫苗开发、毒理学研究等加强对实验动物的体温监测。可以连续的收集可靠和准确的核心温度数据, 同时保持小动物的舒适性和可移动性等正常生理状态。

Anipill胶囊适用于多种动物，如：大鼠、小鼠、比格犬、兔子等。

体温胶囊的主要特点：

·胶囊体积小巧，可口服（视动物大小而定）或植入使用，使用简单，对动物友好；

·无线无导管测量，测试对象亦无需实时佩戴监测器，实现无任何限制测量方案；

·监测器可同时监测 8 枚胶囊数据，且自身可最多 7 台并联，实现测量高通量；

·胶囊内置存储记忆功能，可存储多达 2000 组数据，无需担心数据丢失；

·基于遥测技术，实时连续的核心温度监测。

主要技术参数：

 测量参数：适用温度25-45℃，精确度0.02℃，采样频率30Hz（可设定），内部可存储2000组数据；

 传输参数：传输距离1-3m，传输频率433Hz；

 使用寿命：20天

 规格参数：17.7*8.9mm，重1.7g；

 可同时监测并显示8只动物体内胶囊的传输，并可通过PC/MAC观察分析；

 每台监测器可存储150,185组数据；

应用1：体温调节研究

在四只食蟹猴的腹腔分别植入胶囊，然后把它们与其他未植入的食蟹猴在标准条件下共同饲养。在接下来的一周内，每隔15分钟测量一次体温，实验结果如图。本实验说明，Anipill系统可以用来连续、可靠地测量非人灵长类的体温，并且测量结果可以清晰地反映出食蟹猴体温的昼夜波动规律。

相关文献：

· Laperrousaz et al., (2018) Lipoprotein Lipase Expression in Hypothalamus is involved in the Central Regulation of Thermogenesis and the Response to Cold Exposure

· Meyer et al., (2017) Body Temperature Measurements for Metabolic Phenotyping in Mice

· Rufiange et al., (2020) Pre-warming before general anesthesia with isoflurane delays the onset of hypothermia in rats

应用2：动物生理学⸺时间生物学和睡眠研究

植入到非人灵长类腹膜的胶囊收集到的数据

在大鼠的腹腔内植入胶囊，7天后，监测以下三组大鼠的核心体温在麻醉前后的变化趋势：预热至40℃（PW40, n=17）；预热至高于基线体温1%（PW1%, n = 17）；无预热（NW, n = 17）。本实验说明，在麻醉之前给大鼠进行预热，有助于防止麻醉剂引起的体温过低。

相关论文：

1.van der Vinne V, Pothecary C A, Wilcox S L, et al. Continuous and non-invasive thermography of mouse skin accurately describes core body temperature patterns, but not absolute core temperature[J]. Scientific Reports, 2020, 10(1): 20680.
2.Delezie J, Gill J F, Santos G, et al. PGC-1β-expressing POMC neurons mediate the effect of leptin on thermoregulation in the mouse[J]. Scientific Reports, 2020, 10(1): 1-12.
3.van der Vinne V, Tachinardi P, Riede S J, et al. Maximising survival by shifting the daily timing of activity[J]. Ecology letters, 2019, 22(12): 2097-2102.
4.Hong S H, Hong J H, Lahey M T, et al. A low-cost mouse cage warming system provides improved intra-ischemic and post-ischemic body temperature control–application for reducing variability in experimental stroke studies[J]. Journal of neuroscience methods, 2021, 360: 109228.
5.Belloch F B, Beltrán E, Venzala E, et al. Primary role for melatonin MT2 receptors in the regulation of anhedonia and circadian temperature rhythm[J]. European Neuropsychopharmacology, 2021, 44: 51-65.
6.Tabarean I V. Neurotensin induces hypothermia by activating both neuronal neurotensin receptor 1 and astrocytic neurotensin receptor 2 in the median preoptic nucleus[J]. Neuropharmacology, 2020, 171: 108069.
7.Fenzl A, Kulterer O C, Spirk K, et al. Intact vitamin A transport is critical for cold-mediated adipose tissue browning and thermogenesis[J]. Molecular metabolism, 2020, 42: 101088.

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