中国卫生部制定的蜂蜜的食品安全的国家标准。现行版本为GB 14963—2011。
现行版本 GB 14963—2011
本标准代替 GB 14963－2003《蜂蜜卫生标准》 以及 GB 18796－2005《蜂蜜》中的对应
指标。
本标准与 GB 14693－2003 相比主要变化如下：
——修改了范围；
——增加了蜂蜜的定义；
——将原料要求改为蜜源要求，并明确主要的有毒蜜源植物品种名称；
——修改了感官要求；
——修改了理化指标；
——增加了污染物*、兽药残留*、农药残留*；
GB 14963—2011
正文
1 范围
本标准适用于蜂蜜，不适用于蜂蜜制品。
2 术语和定义
蜂蜜
蜜蜂采集植物的花蜜、分泌物或蜜露，与自身分泌物混合后，经充分酿造而成的天然甜物质。
3 技术要求
3.1 蜜源要求
蜜蜂采集植物的花蜜、分泌物或蜜露应安全无毒，不得来源于雷公藤（ Tripterygium
wilfordii Hook.F.） 、博落回[ Macleaya cordata (Willd.) R.Br]、狼毒（ Stellera chamaejasme L.）等有毒蜜源植物。
3.2 感官要求
感官要求应符合表 1 的规定。
表 1 感官要求
色泽 依蜜源品种不同， 从水白色 （近无色） 至深色 （暗褐色）按 SN/T 0852 的相应方法检验
滋味、气味 具有*的滋味、气味，无异味
状态：常温下呈粘稠流体状，或部分及全部结晶 在自然光下观察状态，检查其有无杂质。
杂质 不得含有蜜蜂肢体、幼虫、蜡屑及正常视力可见 杂质（含蜡屑巢蜜除外）
3.3 理化指标
理化指标应符合表 2 的规定。GB 14963—2011
表 2 理化指标
项 目 指标 检验方法
果糖和葡萄糖/（g/100 g） ≥ 60 GB/T 18932.22
蔗糖/（g/100 g）
桉树蜂蜜，柑橘蜂蜜，紫苜蓿蜂蜜，荔枝蜂蜜，野桂花蜜 ≤ 10
其他蜂蜜 ≤ 5
锌（Zn）/(mg/kg) ≤ 25 GB/T 5009.14
3.4 污染物*
污染物*应符合 GB 2762 的规定。
3.5 兽药残留*和农药残留*
3.5.1 兽药残留*
兽药残留*应符合相关标准的规定。
3.5.2 农药残留*
农药残留*应符合 GB 2763 及相关规定。
3.6 微生物*
微生物*应符合表 3 规定。
表 3 微生物*
项 目 指标 检验方法
菌落总数/（CFU/g） ≤ 1000 GB 4789.2
大肠菌群/（MPN/g） ≤ 0.3 GB 4789.3
霉菌计数/（CFU/g） ≤ 200 GB 4789.15
嗜渗酵母计数/（CFU/g） ≤ 200 附录 A
沙门氏菌 0/25g GB 4789.4
志贺氏菌 0/25g GB/T 4789.5
金黄色葡萄球菌 0/25g GB 4789.10
样品的分析及处理按 GB 4789.1 执行。
GB 14963—2011
编辑
A
嗜渗酵母计数
A.1 设备和材料
除微生物实验室常规灭菌及培养设备外，其他设备和材料如下：
A.1.1 恒温培养箱：25 ℃±1 ℃。
A.1.2 冰箱：2 ℃～5 ℃。
A.1.3 均质器及无菌均质袋、均质杯或灭菌乳钵。
A.1.4 天平： 感量 0.1 g。
A.1.5 无菌试管：18 mm×180 mm。
A.1.6 无菌吸管：1 mL（具 0.01 mL 刻度），10 mL（具 0.1 mL 刻度），或微量移液器及吸
头。
A.1.7 无菌锥形瓶：500 mL，250 mL。
A.1.8 无菌培养皿：直径 90 mm。
A.1.9 无菌 L 型涂布棒：玻璃、塑料或者不锈钢材料制成，棒体直径不应大于 2 mm。
A.1.10 显微镜： 10×～100×。
A.2 培养基和试剂
A.2.1 30%葡萄糖溶液（pH 6.5±0.5）
A.2.1.1 成分
无水葡萄糖 30.0 g
蒸馏水 100 mL
A.2.1.2 制法
称量适量葡萄糖，溶解在蒸馏水中，必要时调节 pH 为 6.4 左右。分装后，115 ℃高压灭
菌 20 min。
A.2.2 氯硝胺 18%甘油（ DG18）琼脂
A.2.2.1 成分
酪蛋白胨 5.0 g
无水葡萄糖 10.0 g
磷酸二氢钾 1.0 g
硫酸镁（MgSO 4 ·H 2 O） 0.5 g
氯硝胺 0.002 g
无水甘油 200 g
琼脂 15 g
氯霉素 0.1 g
蒸馏水 1000 mL
A.2.2.2 制法
除氯霉素外，将全部成分加热煮沸至*溶解，如有必要，调节 pH 为 6.4 左右。加入抗
菌素，121 ℃高压灭菌 15 min，终的 pH 应为 5.6±0.2。灭菌后，立即在 44 ℃～47 ℃水浴
冷却至 50 ℃以下，在每个灭菌平皿中倾注大约 15 mL～20 mL 培养基，放置在水平的台面上
冷却固化备用。 如有必要， 可以放在 36 ℃培养箱中过夜， 使琼脂表面干燥无水珠。 避光保存。
A.3 检验程序
嗜渗酵母检验程序见图 A.1。
GB 14963—20114
图 A.1 嗜渗酵母检验程序图
A.4 操作步骤
A.4.1 样品采集和保存
样品采集后，应尽可能及时检验。若不能及时检验，普通样品应置 2 ℃～5 ℃冰箱保存 ，
在 24 h 内检验。冷冻样品应在 45 ℃以下不超过 15 min 或在 2 ℃～5 ℃不超过 18 h 解冻。
A.4.2 样品稀释
A.4.2.1 取样
以无菌操作在天平上称取固体或液体检样 25 g，加入 30%葡萄糖稀释液 225 g，用旋转
刀片式均质器以 8000 r/min 均质 1 min，或拍击式均质器拍击 2 min，制备成 1:10 的均匀稀释
液。如无均质器，则将样品放入加有玻璃珠的无菌锥形瓶中，并充分振荡。
A.4.2.2 梯度稀释
用灭菌吸管吸取 1:10 稀释液 1 mL，注入含有 9 mL 30%葡萄糖稀释液的试管内，置于漩
涡混悬仪上混匀，制备 1:100 的稀释液。 另取 1 mL 灭菌吸管，按前操作依次制备 10 倍递增
稀释液，每递增稀释一次，换用 1 支 1 mL 灭菌吸管。
A.4.3 涂布和培养
A.4.3.1 根据对检样污染情况的估计， 选择 2 个～3 个连续的适宜稀释度， 每个稀释度接种 2
个 DG18 琼脂平板。在充分混合稀释液之后，立即在每个平板表面接种 0.1 mL，接着用无菌
的 L 型涂布棒进行充分的琼脂表面涂布。注意涂布棒下端不得触碰培养皿的侧缘。进行样品
检验的同时，应同时在 2 个 DG18 琼脂平板表面接种 0.1 mL 的稀释液作为空白对照。
A.4.3.2 接种完成后，尽快将全部平板置 25 ℃±1 ℃恒温箱内避光培养。培养时勿翻转培养
皿。为防止出现霉菌的过度蔓延生长掩盖了目标菌落，在培养 48 h 后，即开始每日观察平板
上面真菌生长情况。培养 7 d 结束。
A.4.4 菌落计数
A.4.4.1 选择菌落数量在 15～150 之间的平板，计数菌落数量。
25 ℃±1 ℃，5 d～7 d
样品 25 g+225 g 30%葡萄糖溶液，充分振荡或均质
10 倍系列稀释
报告
选择 2 个～3 个适当稀释度，各 0.1 mL 涂布 2 个 DG18 琼脂
菌落计数。根据需要，
显微镜下观察可疑菌落
GB 14963—2011
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A.4.4.2 典型的嗜渗酵母在 DG18 琼脂平板上呈现为圆形、中心隆起、不透明、边缘整齐的
菌落，直径 1 mm～2 mm。必要时，可利用低倍显微镜直接观察平板上生长的菌落是否为细
菌菌落。如出现霉菌菌落干扰时，不应计数丝状菌落。
A.4.5 报告
参照 GB 4789.2 的报告方式，以 CFU/g 为单位报告样品中嗜渗酵母的数量。
