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牛细小病毒(BPV)核酸检测试剂盒(荧光 PCR 法)
【产品名称】
通用名称:牛细小病毒(BPV)核酸检测试剂盒(荧光 PCR 法)
Name:Bovine Parvovirus Detection Kit (Real-Time PCR Method)
【包装规格】50T/盒
本试剂盒适用于检测腹泻粪便、肠系膜淋巴结、肝脏、肾、肺、肝、脑、睾丸、胎盘和淋巴结、全血等样本中的牛细小病毒,用于牛细小病毒感染的辅助诊断。
本试剂盒采用 TaqMan 探针法实时荧光 PCR 技术,设计一对牛细小病毒基因组特异性引物,结合一条特异性探针,用荧光 PCR 技术对牛细小病毒基因组的 DNA 进行体外扩增检测,用于临床上对可疑感染者的病原学诊断。
包装规格 | 50T/盒 |
BPV 反应液 | 500μL×2 管 |
酶液 | 50μL×1 管 |
BPV 阳性质控品 | 50μL ×1 管 |
阴性质控品 | 250μL ×1 管 |
不同批号的试剂盒组分不可交互使用。
-20℃±5℃,避光保存、运输、反复冻融次数不超过 5 次,有效期 12 个月。
ABI 、安捷伦 MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、Eppendorf 等系列荧光定量 PCR 检测仪。
捕杀牛:取肺部病变组织,5g;活牛:用灭菌棉拭子沾取牛气管或眼鼻分泌物,然后置于装有 0.5mL 生理盐水的离心管中。
上述标本短期内可保存于-20℃,长期保存可置-70℃,但不能超过 6 个月,标本运送应采用 2~8℃冰袋运输, 严禁反复冻融。
1. 样品处理(样本处理区)
根据待检测样本总数,设所需要的 PCR 反应管管数为 N(N=样本数+1 管阴性对照+1 管阳性对照;样品每满 10份,多配制 1 份),每测试反应体系配制如下表:
步骤 | 循环数 | 温度 | 时间 | 收集荧光信号 |
1 | 1 cycle | 95℃ | 10min | 否 |
2 | 40 cycles | 94℃ | 15sec | 否 |
55℃ | 30sec | 是 |
1.1 结果分析条件设定
设置 Baseline 和 Threshold:一般直接按机器自动分析的结果分析,当曲线出现整体倾斜时,根据分析后图像调节 Baseline 的 start 值(一般可在 3~15 范围内调节)、stop 值(一般可在 5~20 范围内调节),以及 Threshold 的Value 值(上下拖动阈值线至高于阴性对照),重新分析结果。
阳性:检测通道 Ct 值≤35,且曲线有明显的指数增长曲线;
可疑:检测通道 35<Ct 值≤38,建议重复检测,如果检测通道仍为 35<Ct 值≤38,且曲线有明显的增长曲线, 判定为阳性,否则为阴性;
阴性:样本检测结果 Ct 值>38 或无 Ct 值。
阴性质控品:Ct>38 或无 Ct 值显示;
阳性质控品:扩增曲线有明显指数生长期,且 Ct 值≤32; 以上条件应同时满足,否则实验视为无效。
牛腺病毒3型(BAV-3)试剂盒(荧光-PCR法)【注意事项】
Ø 所有操作严格按照说明书进行;检验过程中,参照《GB/T 27403 实验室质量控制规范 食品分子生物学检测》的规定进行。
Ø 试剂盒内各种组分使用前应自然融化,混匀并短暂离心;
Ø 反应液应避光保存;
Ø 反应中尽量避免气泡存在,管盖需盖紧;
Ø 使用一次性吸头、一次性手套和各区工作服;
Ø 样本处理、试剂配制、加样需在不同区进行,以免交叉污染;
Ø 实验完毕后用 10%次氯酸或 75%酒精或紫外灯处理工作台和移液器;
Ø 试剂盒里所有物品应视为污染物对待,并按照《微生物生物医学实验室生物安全 通则》进行处理。
1. 特异性:所有产品使用的引物均经过详尽的生物信息学分析,经过GenBank及自建庞大数据库的比对,确保
所用的每一条引物均为种属或血清型特异的基因序列区段,可实现对细菌种属及血清型的特异检测。
2. 重现性:该系列所有产品均经过大量实验菌株的验证。
3. 灵敏性:该系列产品可实现对检测菌的高灵敏检测,当样品中细菌的浓度达到103cfu/ml时,可实现对其的直接检测,无需繁琐的增菌过程。
4. 实用性:检测范围广,涵盖了对人体危害较为严重的17种呼吸道及肠道致病菌,可实现对临床样品及其他环境取样的快速检测,整个检测过程为3-4个小时。