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原代细胞质粒DNA转染试剂
货号:T2120
存储条件:: 4-8℃保存,有效期一年。每次使用之前请先将本品上下颠倒混匀。
产品说明:
LabFect Plasmid原代细胞小核酸转染试剂是专门用于原代细胞质粒DNA转染的转染试剂。LabFect Plasmid 具有非常卓yue的转染性能,可高效转染多种原代细胞,转染效率高达70% 以上(EGFP质粒)。LabFect Plasmid不仅可转染较大分子的质粒DNA,还可转染RNA和小分子DNA。与目前市场上常见的脂质体转染试剂不同,LabFect Plasmid 采用生物可降解材料配制,对细胞的毒性很低,转染后细胞死亡率不到10%。LabFect Plasmid 使用也非常方便,先将转染试剂与质粒DNA混合,再将转染试剂-DNA复合物直接加入培养细胞中,血清不影响其转染效果,不必刻意添加或更换培养液,操作十分简便。。
产品特点:
卓yue的细胞转染性能:可高效转染多种原代细胞,转染效率高达70%以上;
极低的细胞毒性:使用可降解生物材料,细胞毒性低,转染细胞死 亡率不到10%,大大降低了因细胞毒性对实验结果的影响,实验结 果更为客观;
操作简便,可用于含血清培养基培养细胞的转染,转染前后不需要更换培养液。
注意事项:
因细胞密度随细胞系不同会有很大差别,且细胞密度直接决定转染效率,因此请在转染过程中尽量保持同样的接种比例,以提高转染重复性。多数哺乳动物细胞应在37℃、5%CO2条件下培养。其他的一些细胞系,例如昆虫细胞,需要在不同的温度和CO2浓度下进行培养。请根据具体细胞系选择最shi培养条件。应避免包装反应体系中存在血清,因血清会干扰LabFect与DNA形成复合物 。如果转染DNA量较大或者当复合物包装时反应体系中出现沉淀时, 请将包装反应体系调整至1ml进行。
适用细胞系:大鼠肝细胞、血管平滑肌细胞、血管内皮细胞、肺泡上皮 细胞、乳腺癌细胞、肺癌细胞、大肠癌细胞、肝癌细胞等
试剂盒内容物:LabFect原代细胞小核酸转染试剂
方法步骤(以24孔板转染为例):
1. 细胞接种:
a. 转染前24小时左右对细胞进行铺板(不含抗生素),培养过夜;
b. 确保转染时细胞密度达90%-95%。
2. LabFect/DNA复合物包装(该步完成后应立即转染):
a. 在1.5 ml无菌离心管中加入50µl无血清培养基,并添加适量的转染试剂(参见附表) 。用移液器轻轻混匀后在室温静置5分钟。
b. 在1.5 ml无菌离心管中加入50µl无血清培养基,并添加适量的 DNA,用移液器轻轻混匀后在室温静置5分钟。 (参见附表。首ci使用建议在附表提供的DNA和转染试剂参考量的基础上进行优化实验,以摸索两者之间的最you搭配比例)。
c. 将LabFect-培养基混合物滴加至DNA-培养基混合物中,用移液器 轻轻混匀后在室温静置15~20分钟后,立即转染。注意: LabFect-培养基混合物和DNA-培养基混合物的混合次序非常重要,切勿颠倒。
3. 转染:
注意:LabFect在*培养基中(基础培养基中添加血清)具有最gao的转染效率,因此转染前后不需要换成无血清培养基。 a. 如特殊情况,可在转染开始之前更换新鲜的含血清培养基,以防转染后孵育阶段细胞密度太大、营养不足导致的细胞死亡。
b. 将步骤2制备的复合物滴加至培养基中。轻轻晃动培养皿以使复合物均匀分布。
c. 培养4h后,加入1ul溶液A,轻摇混匀(此步可选,溶液A另购)。
d. 过夜培养24~48小时。
e. 注意:如果转染后需要更换新鲜培养基,请于加入LabFect/DNA复合物12~24小时后进行。培养基更换后,孵育24~48小时后再进行后续实验。
f. 收获细胞,进行后续实验。
质量控制
本产品经严格的质量检验证明,无生物污染
注意:
本产品仅用于科研实验
附表:不同培养体系推荐初始转染条件
培养皿 | 96 孔板 | 48 孔板 | 24 孔板 | 12 孔板 | 6 孔板 | 10cm 皿 | |
表面积 (cm2) | 0.35 | 1.0 | 1.9 | 3.8 | 9.6 | 59 | |
培养基 试剂 DNA 量 | 无血清培养基(μl) | 20 | 50 | 100 | 200 | 400 | 2000 |
LabFect (μl) | 0.25 | 0.5 | 1.4 | 2.5 | 5 | 50 | |
1μg/μl plasmid (μl) | 0.15 | 0.3 | 0.8 | 1.5 | 3 | 60 | |
*培养基(ml) | 0.10 | 0.25 | 0.50 | 1.0 | 2.0 | 10 |