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YF®488TUNEL 细胞凋亡试剂盒
产品货号:B0013
存储条件:本产品应置于-20℃储存,组分 B 需避光,避免反复冻融。
注:组分 A 和 B 使用时请佩戴口罩、手套,接触皮肤,请立即用大量水冲洗。
产品组分
组分 | 20T | 50T |
A. TUNEL Equilibration Buffer | 2×1 mL | 5 mL |
B. YF®488 TUNEL Reaction Buffer | 1 mL | 2 × 1.25 mL |
C. TdT Enzyme | 20 μL | 50 μL |
D. Proteinase K (2 mg/mL) | 40 μL | 10 0 μL |
E. DNase I (2 U/μL) | 5 μL | 13 μL |
F. 10 × DNase I Buffer | 10 0 μL | 26 0 μL |
产品介绍
细胞凋亡的一个显著特点是细胞染色体 DNA 的降解, 这种降解非常特异并有规律,所产生的不同长度的DNA片段为180 bp-200 bp的整数倍,表现为琼脂糖凝胶电泳中呈现特异的梯状Ladder图谱。本试剂盒采用 TUNEL 法,应用末端脱氧核糖核苷酸转移酶(Terminal Deoxynucleotidyl Transferase, TdT)在凋亡细胞中断裂DNA的3´-OH末端催化掺入 YF®/Cy-dUTP,YF®/Cy-dUTP 标记的 DNA 可以用荧光显微镜直接观察或者用流式细胞仪定量。TUNEL 法可以选择性的检测凋亡细胞,而非坏死细胞或因辐照和药物治疗而造成的 DNA 链断裂的细胞。标记的dUTP(如di高辛-dUTP、生wu素-dUTP),可以直接进行原位检测,是一种更快速、直接的检测手段。
使用方法
实验材料(自备)
PBS 缓冲液(pH~7.4)
4%多聚jia醛(PBS 配制)
牛血清白蛋白(BSA)或正常的羊、牛血清
70%乙醇(自选)
脱蜡溶剂(石蜡切片样本)
实验步骤
1.样本准备:
(1)细胞样品
a.可选:准备一份阴性对照样本(加入不含TdT酶的TUNEL 反应液)。
b.PBS 清洗细胞两次。
c.细胞固定:加适量 4%多聚jia醛(pH 7.4),4℃放置 30 min
d.PBS 清洗细胞两次。
e.通透细胞:细胞可用配制于 PBS 中的 0.2% Triton X-100溶液通透,室温放置 20 min。
f.PBS 清洗细胞两次。
(2)石蜡组织切片
a.室温下用二甲苯浸泡石蜡组织切片2次,每次 5 min,以彻di脱掉石蜡。
注:二甲苯有毒,易挥发,请在通风橱中进行此操作。
b.室温下,将样本浸没于无水乙醇中漂洗 2 次,每次 5 min。
c.室温下,将切片样本连续依次浸没在不同浓度梯度的乙醇(95%、90%、80%、70%)中,每种浓度各漂洗 1 次, 每次5 min。
d.室温下,将切片浸没于纯水中漂洗 3 min,再将切片浸没于1×PBS 中漂洗3 min,用滤纸小心吸干切片样本周围液体。
e.用免疫组化笔描绘样本轮廓,以便下游通透与标记。
f.按 1: 100 的比例,将 2 mg/mL 的蛋白酶 K 溶液用 1× PBS 稀释至终浓度 20 µg/mL,在每个样本上滴加 100 µL,使溶液覆盖全部样本区域,室温孵育 20 min。(蛋白酶 K 的孵育时间、温度需根据不同类型组织样本进行优化)。
注:蛋白酶 K 可以帮助渗透组织,时间短达不到通透效果, 但延长孵育时间可能导致切片脱落。一般情况下,厚度 4 µm孵育 10 min,厚度 30 µm 孵育 30 min。
g.PBS 浸润清洗切片 2 次,每次 5 min,用滤纸吸去多余的液体,将处理好的样品放在湿盒中保持湿润。
注:这一步必须把蛋白酶 K 洗涤干净,否则会严重干扰后续的标记反应。
(3)冰冻组织切片
a.将冰冻切片放置于室温的片架上,室温 20 min,晾干。
b.将载玻片浸没在 4%多聚jia醛溶液中,室温固定 30 min。
c.PBS 浸润清洗切片 2 次,每次 5 min。
d.用滤纸小心吸干切片样本周围液体。
e.按 1: 100 的比例,将 2 mg/mL 的蛋白酶 K 溶液用 1× PBS 稀释至终浓度 20 µg/mL,在每个样本上滴加 100 µL,使溶液覆盖全部样本区域,室温孵育 20 min。(蛋白酶 K 的孵育时间、温度需根据不同类型组织样本进行优化)。
注:蛋白酶 K 可以帮助渗透组织,时间短达不到通透效果, 但延长孵育时间可能导致切片脱落。一般情况下,厚度 4 µm孵育 10 min,厚度 30 µm 孵育 30 min。
f.PBS 浸润清洗切片 2 次,每次 5 min,用滤纸吸去多余的液体,将处理好的样品放在湿盒中保持湿润。
(4)阳性处理(仅阳性对照进行此步骤,其他样品直接进行 TUNEL 反应步骤)
a.按 1: 10 的比例用ddH2O 将 10× DNase I Buffer 稀释成 1×DNase I Buffer 备用。
b.滴加 100 µL 1× DNase I Buffer 到已通透的样本上,覆盖全部样本区域,室温平衡 5 min。
c.用 1× DNase I Buffer 以 1: 100 稀释 DNase I (2 U/μL)至终浓度 20 U/mL 的工作液。
d.轻轻吸掉多余液体, 加入 100 μL 浓度为 20 U/mL 的DNase I 工作液,室温孵育 10 min。
e.轻轻吸掉多余液体,PBS 清洗样品 2 次。
2.TUNEL 反应
(1)每个样本加入 100 μL TUNEL Equilibration Buffer,室温孵育 5 min。
(2) 预先配制 TUNEL 反应混合液: 每 50 μL TUNEL Reaction Buffer 中加入 1 μL TdT 酶。
(3)弃去 TUNEL Equilibration Buffer,每个样本加入 50 μLTUNEL 反应混合液。
a.贴壁细胞,用盖玻片使缓冲液均匀覆盖样本。37℃避光孵育 60 min。
b.悬浮细胞,可加入微孔板中,采用微孔板振荡器进行孵育或每隔 15 min 温和的震荡反应管,使之充分反应。37℃ 避光孵育 60 min。
c.组织样本,用盖玻片使缓冲液均匀覆盖样本。将样本平放于湿盒内,37℃恒温箱孵育 2 h(湿盒底部铺一张含少量水的纸巾保持湿度)。
(4)去掉反应液,在 1× PBS 的染色缸中浸泡润洗 2 次,每次 5 min。再使用适量配制于 PBS 中的 0.1% Triton X-100, 其中含 5 mg/mL BSA 的缓冲液清洗样本 3 次,每次 5 min, 以降低背景。
(5)(可选)复染:每个样本滴加浓度为 2 μg/mL 的 DAPI染液,室温避光孵育 10 min。染色完成后,去掉染液,并将样本在 1× PBS 中浸泡润洗 3 次,每次 5 min。
(6)(可选)石蜡切片封片:将切片依次在纯水、70%乙醇、80%乙醇、90%乙醇、95%乙醇、无水乙醇中浸没 5 min, 最后将切片样本置于染色缸中以新鲜的二甲苯浸泡,透明化处理 2 次,每次 5 min。脱水完成后,擦去切片周围的液体, 每个样本滴加 50 μL 抗荧光淬灭封片液,盖上盖玻片,用镊子的钝端轻轻敲击盖玻片,去除气泡以使封片wan全。
7) 用荧光显微镜或流式细胞仪观察。(凋亡细胞应被标记上明亮的荧光,没有加入 TdT 酶的阴性对照样本不能被标记上荧光)。
注意事项
1.荧光染料均存在淬灭问题,保存和使用过程中请尽量注意避光,以减缓荧光淬灭。
2.为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。