1.脱蜡水化。将石蜡切片置于新鲜二甲苯脱中浸泡 15 分钟,重复三次。去除多余的液体后,依次置于无水乙醇、95%乙醇、90%乙醇、80%乙醇、70%乙醇,各浸泡 5 分钟,蒸馏水(或自来水)冲洗 5 分钟。用 PBS 缓冲液(试剂 1,将干粉溶解于 1L 去离子水中)冲洗切片 5 分钟,重复三次。
2.抗原修复。将脱蜡水化后的组织切片置于烧杯(或修复盒)中的耐高温塑料切片架上,加适量修复液 1× 柠檬酸钠抗原修复液(试剂 2,将 100×柠檬酸钠抗原修复液加去离子水稀释成 1×柠檬酸钠抗原修复液),液面要浸过切片组织一定高度,将修复盒置于沸水中煮沸修复 15 分钟后取出玻片,自然凉至室温。用 PBS 缓冲液冲洗切片 5 分钟,重复三次。
注意:抗原修复时,修复液务必保证切片始终浸泡在液体内,一般情况:修复液的量约为 800mL/1 架。
3.阻断内源性过氧化物酶。用吸水纸擦干玻片,免疫组化笔在组织周围画圈,滴加 50μL 内源性过氧化物酶阻断剂(试剂 3)到切片组织上以阻断内源性过氧化物酶,室温孵育 30 分钟,用 PBS 缓冲液冲洗切片 5 分钟,重复三次。
4.血清封闭。用吸水纸擦干玻片,滴加 50μL 正常山羊血清工作液(试剂 5),37℃封闭 20 分钟,以减少非特异性染色。
5.一抗孵育。用抗体稀释液(试剂 4)将一抗原液稀释成工作液,用吸水纸擦干玻片组织周围的液体,滴加适量抗体工作液,置于湿盒 4℃孵育过夜或 37℃孵育 1h-2h。
6.复温。4℃过夜后从冰箱拿出样本,在室温下孵育 15min 复温(抗体孵育为 4℃过夜选用此步骤,如室温孵育直接进入下一步清洗)。用 PBS 缓冲液冲洗切片 5 分钟,重复三次。
7.二抗孵育。吸水纸擦干切片后滴加 50μL 生物素标记的羊抗兔 IgG(试剂 6),37℃孵育 20 分钟,用 PBS缓冲液冲洗切片 5 分钟,重复三次。
8.三抗孵育。吸水纸擦干切片后滴加 50μL 辣根酶标记的链酶卵白素孵育(试剂 7),37℃孵育 20 分钟,用 PBS 缓冲液冲洗切片 5 分钟,重复三次。
9.显色。甩去 PBS 缓冲液,吸水纸擦干切片; 每张切片滴加新鲜配制的 DAB 工作液 50μL(试剂 8:试剂 9:试剂 1=1:1:18 比例配置),孵育 3-5min,光学显微镜下观察染色结果,切勿显色过深;显色后用自来水冲洗切片终止显色。
10.复染。滴加适量苏木素染液(试剂 10)复染,孵育 1-5 分钟,自来水冲洗 5 分钟,滴加盐酸酒精分化液分化 30 秒,自来水冲洗。
11.脱水封片。将玻片依次置于 70%乙醇、80%乙醇、90%乙醇、95%乙醇、无水乙醇,各浸泡 5 分钟, 再将玻片放入二甲苯中浸泡 15 分钟,重复三次。玻片取出来稍晾干,用中性树胶封片。
