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TaqI 快速内切酶
产品货号:F5580s
储存条件:-20℃
同裂酶:TthHB8I
注:同裂酶对于不同的甲基化修饰也许具有不同敏感性。
产品组成
组分 | 规格 |
LabFD™ TaqI | 200ul |
10×LabFD™ Buffer | 2x1ml |
10×LabFD™ Color Buffer | 2x1ml |
产品简介
LabFD™快速内切酶是一系列经过基因工程重组、能够在5~15分钟内精确完成DNA切割的高保真限制性内切酶,适用于质粒DNA、PCR产物或基因组DNA等的快速酶切。LabFD™快速内切酶具有如下特点:5~15分钟内即可完成酶切;共用一种酶切Buffer,大大简化酶切反应体系;良好的酶活冗余度,轻松应对底物过量或困难模板酶切。此外,LABLEAD去磷酸化、连接试剂在LabFD™酶切Buffer中具有100%活性,支持一管化反应,提升“酶切-修饰-连接”的体验。
建议反应条件
1×LabFD™缓冲液;
65℃温育;
参照“DNA快速酶切流程”配制反应体系。
失活条件
不可热失活,请使用酚氯仿抽提或柱纯化。
质量控制
功能活性检测
最适反应温度下,在20ul反应体系中,1ul LabFD™ TaqI能够在15min内wanquan消化1ug λDNA (Dam-)。
超长时间温育检测
最适反应温度下,将1ul LabFD™ TaqI与1ug λDNA (Dam-)共同温育3h,未检测到其他核酸酶污染或星号活性引起的底物非特异性降解,延时酶切可能出现星号活性。
酶切-连接-再酶切检测
最适反应温度下,使用1ul LabFD™ TaqI消化底物,回收酶切产物。在22℃下使用适量Fast T4 DNA Ligase可以将酶切产物重新连接。将连接产物再次回收后,使用相同的内切酶可以重新切开连接产物。
使用方法
1.DNA快速酶切流程
1)在冰上按如下建议的加样顺序配制反应体系:
质粒DNA | PCR产物 | 基因组DNA | |
ddH2O | 15ul | 16ul | 30ul |
10×LabFD™ Buffer或10×LabFD™ Color Buffer | 2ul | 3ula | 5ul |
底物DNA | 2ul(up to 1ug) | 10ul(~0.2ug) | 10ul(5ug) |
LabFD™ TaqI | 1ul | 1ul | 5ul |
Total | 20ul | 30ul | 50ul |
注:本体系适用于经过纯化的PCR产物酶切,未纯化的PCR具备一定的离子强度,10xLabFDTMbuffer加入量可适当减少至2ul。但由于DNA聚合酶同时具有外切酶活性,会影响酶切产物,因此如下一步需进行克隆等操作,建议酶切前对PCR产物进行纯化。
2)轻柔吸打或轻弹管壁以混匀(切勿涡旋),然后瞬时离心以收集挂壁液滴;
3)65℃温育15min(质粒),或15~30min(PCR产物),或30~60min(基因组DNA);
4)酚氯仿抽提或柱纯化。
2.双酶切或多酶切
1)每种快速内切酶的用量为1ul,并根据需要适当扩大反应体系;
2)所有快速内切酶的体积总和不得超过总反应体系的1/10;
3)如果所用的几种快速内切酶的最适反应温度不同,应先以最适温度低的酶开始酶切,再
添加最适温度较高的酶,在其最适反应温度下进行酶切反应。
3.适用于质粒的扩大反应体系
DNA | 1ug | 2ug | 3ug | 4ug | 5ug |
LabFD™ TaqI | 1ul | 2ul | 3ul | 4ul | 5ul |
10×LabFD™ Buffer或10×LabFD™ Color Buffer | 2ul | 2ul | 3ul | 4ul | 5ul |
Total | 20ul | 20ul | 30ul | 40ul | 50ul |
注:如果总反应体系大于20ul,应适当增加温育时间,尽量使用水浴、金属浴或沙浴。
不同DNA中的酶切位点数量
λDNA | ΦX174 | pBR322 | pUC57 | pUC18/19 | SV40 | M13mp18/19 | Adeno2 |
121 | 10 | 7 | 4 | 4 | 1 | 12 | 50 |
甲基化修饰影响
Dam | Dcm | CpG | EcoKI | EcoBI |
序列可能重叠 剪切受阻 | 无影响 | 无影响 | 无影响 | 无影响 |
在不同反应缓冲液中的活性
LabFD™ Buffer | Thermo Scientific FastDigest Buffer | NEB CutSmart®Buffer | Takara QuickCut™Buffer | |
活性 | 100% | 100% | 无此酶 | 100% |
注:活性数据来自LABLEAD限制酶标准反应体系下的检测。