肝部分切除基本以30%、50%、70%和90%肝切除为主，根据肝叶比例进行相应切除，但右上叶和右下叶同属一个功能单位，两者有一段融合共用的脉管系统，单独切除其中一部分容易损伤残留肝叶脉管系统的通畅性。肝切除对肝再生的刺激强度与所切除肝脏的质量有直接的关系，切除量大于85%或小于30%均可导致再生缓慢。

构建小鼠 70%肝脏切除模型

实验动物选择：

小鼠肝脏分叶结构明显并都有相对独立的肝静脉系统和Glisson系统，各肝叶比重相对固定，便于进行不同比例肝部分切除，且其胆囊解剖更接近人类。且小鼠大部分肝切除模型是当前研究肝脏再生的最佳模型，可用于模拟肝脏再生的起始、增殖和终止阶段。

肝切除模型造模方法:

（一）用2%异氟的烷气体麻醉小鼠。

（二）腹部消毒后，取剑突下腹部正中竖切口，长度 1.5cm-3cm，开腹时注意不要损伤腹腔器官组织，依次切开表皮、肌层及腹膜，找到肝脏，用镊子拉开并固定两侧腹肌，充分暴露肝脏。

（三）用眼科剪游离与肝脏相关的韧带，先后结扎肝中叶及左外侧叶并切除，注意保留胆囊；结扎时要靠近肝叶基底，尽量减少肝叶的残留和对血管的损伤，结扎时动作要轻柔，避免撕扯到肝下的血管。

但值得注意的是，结扎中叶时线结的位置不能太靠近肝上的腔静脉，否则会导致静脉闭塞或狭窄，阻碍残留的右叶和尾叶的血液回流，从而导致肝组织的坏死和再生的失败。因此，线结的位置应该超过胆囊，但与上腔静脉的距离应不小于2mm。

（四）回纳剩余肝组织及腹内容物，依次缝合关腹，缝合后再次消毒切口。术后禁食禁水6h。皮下注射5%葡萄糖的注射液替代术中蒸发损失，出血和液体移位中的液体损失，并作营养用，放置于37℃温箱复温6h。

（五）以手术结束为0h，根据分组时间点要求分别于术后24h、72h、7d将动物处死，称量并记录各组再生肝脏的重量，取样。肝组织收集后迅速-80℃低温冰箱保存。

构建肝脏缺血再灌注损伤模型

实验动物选择

缺血再灌注损伤实验模型多选用大鼠等啮齿类动物来建立。相对与大小鼠而言，小鼠具有饲养成本低、空间利用率高、药剂消耗量小、操作同步性好等优点。

动物品系：Balb/c小鼠，雄性，周龄为6-8w

造模方法

1、 术前12h禁食，自由饮水。

2、 腹腔注射麻醉，麻醉成功后将小鼠平躺在手术的台上胶带固定四肢，将小鼠腹部术去毛，用碘酒和75％乙醇术区消毒。

3、 取腹正中切口1cm，打开腹腔，小心分离出肝脏供血的门静脉和肝动脉。

4、 用无创血管的夹夹闭门静脉和肝动脉，0.5min后，肉眼可见阻断叶明显变白，说明阻断成功，用止血的钳夹闭皮肤切口临时关闭腹腔，将小鼠放恒温加热毯上保温。

5、 完成持续缺血60min后，重新打开腹腔，迅速取出血管的夹，恢复缺血肝血流，0.5min左右可见缺血区肝脏由白色逐渐恢复为鲜红色表明再灌注成功，逐层缝合腹腔肌肉和皮肤关闭腹腔，完成手术。待小鼠清醒后放回饲养室饲养，密切关注小鼠的状态及生存状况并做好记录。