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谷*甘肽还原酶活性系数(GRAC)检测试剂盒说明书
可见分光光度法
货号:BC6000
规格:50T/24S
产品组成:使用前请认真核对试剂体积与瓶内体积是否一致,有疑问请及时联系索莱宝工作人员。
试剂名称 | 规格 | 保存条件 |
试剂一 | 液体40 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
试剂二 | 粉剂×1支 | 2-8℃保存 |
试剂三A | 粉剂×1支 | -20℃保存 |
试剂三B | 液体1 mL×1支 | 2-8℃保存 |
试剂四 | 液体1.2 mL×1支 | 2-8℃保存 |
试剂五 | 粉剂×1支 | -20℃保存 |
试剂六 | 液体20 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
试剂七 | 液体50 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
溶液的配制:
1. 试剂二:临用前加入1.2mL蒸馏水,充分溶解,2-8℃可保存4周;
2. 试剂三:临用前取试剂三A加入0.537mL试剂三B,充分溶解,-20℃可分装保存4周,避免反复冻融;
3. 工作液:临用前根据样本量按照试剂一:试剂二:试剂三:试剂四= 80μL:20μL:8μL:20μL(128μL,1T)的比例配制工作液,现用现配;
4. 试剂五:临用前加入1.2mL蒸馏水,充分溶解,-20℃可分装保存4周,避免反复冻融;
5. 试剂五工作液:临用前根据样本量按照试剂五:蒸馏水=5μL:95μL(0.1mL,5T)的比例配制,现用现配。
产品说明:
谷*甘肽还原酶(Glutathione Reductase,GR)是广泛存在于真核与原核生物中的一种黄素蛋白氧化还原酶,该酶以核黄素衍生物核黄素腺嘌呤二核苷酸(FAD)为辅基,催化NADPH还原氧化型谷*甘肽(G SSG)生成还原型谷*甘肽(GSH),维持巯基和膜蛋白处于还原状态。当生物体内缺乏核黄素时,FAD含量相应减少,GR活性也随之降低,谷*甘肽还原酶活性系数(GR Activation Coefficient,GRAC)迅速升高,出现唇炎、口角炎、结膜炎等临床症状。因此,GRAC用于核黄素营养状况评价,对于早期发现缺乏病患者采取防治措施具有重要意义。
GR催化NADPH还原G SSG,生成GSH,GSH与5,5’-二硫代-双-(2-*甲酸)(5,5’-dithiobis-2-nitrobenoic acid,DTNB)反应产生2-硝基-5-*甲酸,2-硝基-5-*甲酸在波长412nm处有特征吸收峰,通过412nm处吸光度的变化可计算GR的活性。根据加入FAD前后GR活性的变化可计算得到GRAC。
注意:实验之前建议选择2-3个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。
需自备的仪器和用品:
可见分光光度计、低温离心机、分析天平、水浴锅/恒温培养箱、1mL玻璃比色皿、可调式移液枪、研钵/匀浆器/细胞超声破碎仪、冰和蒸馏水。
操作步骤:
一、 样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献)
1. 组织样本:按质量(g):试剂一体积(mL)=1:5~10比例加入试剂一(建议称取0.1g样本,加入1.0mL试剂一),冰浴匀浆后,于4℃,12000rpm离心10min,弃沉淀,取上清液置于冰上待测。
2. 细胞样本:按细胞数量(104):试剂一体积(mL)=500~1000:1的比例加入试剂一(建议500万细胞加入1.0mL试剂一),冰浴超声破碎细胞(功率200W,超声3s,间隔7s,总时间3min),然后于4℃,12000rpm离心10min,弃沉淀,取上清液置于冰上待测。
3. 全血/红细胞:建议取10μL全血/红细胞,加入990μL试剂一,充分溶血混匀,于4℃,4000rpm离心10min,弃沉淀,取上清液置于冰上待测。
4. 血清/血浆等液体样本:直接测定。若有浑浊请离心后取上清置于冰上待测。
二、 测定步骤
1.可见分光光度计预热30min以上,调节波长至412nm,蒸馏水调零。
2.将工作液37℃预热10min。
3.操作表:(在1.5mL EP管中加入下列试剂)
试剂名称(μL) | 测定管 | 对照管 | 空白管 |
样本 | 120 | 120 | - |
蒸馏水 | - | 20 | 120 |
工作液 | 128 | 128 | 128 |
试剂五工作液 | 20 | - | 20 |
混匀,37℃孵育30min | |||
试剂六 | 320 | 320 | 320 |
混匀,4000rpm离心10min,取上清液于EP管中待测 | |||
上清液 | 240 | 240 | 240 |
试剂七 | 800 | 800 | 800 |
混匀,室温静置5min,取1mL反应液于1mL玻璃比色皿中,测定412处的吸光值,分别记为A测定、A对照、A空白。每个测定管需设置一个对照管,空白管只需测定1-2次。 |
三、GRAC活性计算
GRAC=(A测定-A空白)÷(A对照-A空白)
注意事项:
1. 建议准备核黄素水平正常的样本进行检测,方便与核黄素缺乏的样本进行比较;如果没有核黄素水平正常的样本,可参考一般核黄素水平正常的样本GRAC为0.9-1.2;
2. 如果样本测定管吸光值大于1.5,建议将样本用试剂一稀释后进行测定;如果样本测定管吸光值接近空白管,可适当增大样本质量重新提取或提高加样表中样本体积,对照管、空白管蒸馏水需进行相应调整。
3. 样本蛋白浓度需自行测定。由于提取液中含有一定浓度的蛋白(约0.11mg/mL),所以在测定样本蛋白浓度时需要减去提取液本身的蛋白含量。
实验实例:
1. 取0.1051g大鼠肾脏样本,加入1mL试剂一进行冰浴匀浆,离心后取上清,按照测定步骤操作,用1mL玻璃比色皿测得:A测定=0.482,A对照=0.465,A空白=0.084,计算得:
GRAC=(A测定-A空白)÷(A对照-A空白)= 1.045。
2. 取10μL人红细胞,加入990μL试剂一,充分溶血混匀,离心后取上清,按照测定步骤操作,用1mL玻璃比色皿测得:A测定=0.530,A对照=0.529,A空白=0.084,计算得:
GRAC=(A测定-A空白)÷(A对照-A空白)= 1.002。
3. 取马血清样本,直接按照测定步骤操作,用1mL玻璃比色皿测得:A测定=0.453,A对照=0.451,A空白=0.084,计算得:
GRAC=(A测定-A空白)÷(A对照-A空白)= 1.005。
参考文献:
[1] Sauberlich H E, Judd J H, Nichoalds G E, et al. Application of the erythrocyte glutathione reductase assay in evaluating riboflavin nutritional status in a high school student population [J]. The American Journal of Clinical Nutrition, 1972, 25(8): 756-762.
[2] Gu CF, Chen YZ, Wang ZY. A study of the activation coefficients of blood glutathione reductase in the evaluation of experimental riboflavin deficiency [J]. Acta Nutrimenta Sinica, 1981, 3(4): 251-260.
[3] Ono S, Hirano H. FAD-induced in vitro activation of glutathione reductase in the lens of B2 deficient rats [J]. Current eye research, 1984, 3(4): 663-665.
[4] He J, Hu ML, H YM, et al. Study on the optimum conditions for determination of glutathione reductase activity coefficient in whole blood [J]. Chinese Journal of Public Health, 2002, 18(5): 615-616.
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