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抗坏血酸/总抗坏血酸(AsA/T-AsA)含量检测试剂盒(比色法)说明书
可见分光光度法
货号:BC4630
规格:50T/24S
产品内容:使用前请认真核对试剂体积与瓶内体积是否一致,有疑问请及时联系索莱宝工作人员。
试剂名称 | 规格 | 保存条件 |
提取液 | 液体40 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
试剂一 | 粉剂×1瓶 | |
试剂二 | 液体20 mL×1瓶 | |
试剂三 | 液体3 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
试剂四 | 液体30 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
试剂五 | 液体20 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
试剂六 | 粉剂×1瓶 | 2-8℃保存 |
试剂七 | 液体12 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
标准品 | 粉剂×1支 | 2-8℃保存 |
溶液的配制:
1、 试剂一:临用前加入3.3 mL 蒸馏水充分溶解待用,用不完的试剂-20℃分装避光保存。
2、 试剂六:临用前加入12 mL 70%乙醇(V/V)溶液溶解。
3、 标准品:临用前配制,加入1.136mL提取液充分溶解;吸取0.01 mL上述溶液,加入 0.99 mL提取液,混匀,即 500 nmol/mL AsA标准溶液。
产品说明:
抗坏血酸(AsA)是辅酶、自由基清除剂、电子共体/受体和草酸盐与酒石酸盐生物合成的底物等。作为植物细胞中最重要的抗氧化剂,AsA在保护叶绿体免于氧化损伤起着举足轻重的作用,也是衡量农作物产品品质的重要指标之一。脱氢抗坏血酸(DHA)是AsA的可逆的氧化型,在生物体内,与抗坏血酸共同组成氧化还原系统,具有电子受体作用。
AsA具有还原性,能将Fe3+还原成Fe2+,Fe2+与2,2’-联吡啶形成粉红色络合物,在525nm处有特征性吸收峰。DTT可还原DHA生成AsA,可用于检测样本总抗坏血酸(AsA+DHA)含量。
注意:实验之前建议选择2-3个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。
需自备的仪器和用品:
研钵/匀浆器、冰、低温离心机、可见分光光度计、1 mL玻璃比色皿、可调式移液器、乙醇和蒸馏水。
操作步骤:
一、 样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献)
1. 组织:按照组织质量(g): 提取液体积(mL)为 1: 5~10的比例(建议称取约 0.1 g组织,加入1 mL提取液)进行冰浴匀浆。13000g,4℃离心 10 min,取上清置冰上待测。
2. 细胞或细菌:按照细胞数量(104个): 提取液体积(mL)为 500~1000 :1的比例(建议500万细胞加入1 mL提取液),冰浴超声波破碎细胞(功率 300 W,超声 3 秒,间隔 7 秒,总时间 3 min);13000g,4℃离心10 min,取上清液置冰上混匀待测。
3. 血清等液体:取500 μL样本,加入500 μL提取液,漩涡混匀。13000g,4℃离心10 min,取上清置冰上待测。
二、 测定步骤
1. 分光光度计预热 30 min,调节波长到 525 nm,蒸馏水调零。
2. AsA含量测定
AsA含量测定操作表,按照操作表加入下列试剂:
试剂名称(μL) | 测定管 | 对照管 | 空白管1 | 空白管2 | 标准管 |
样本 | 50 | 50 | - | - | - |
提取液 | - | - | 50 | 50 | - |
标准溶液 | - | - | - | - | 50 |
试剂二 | 200 | 200 | 200 | 200 | 200 |
试剂四 | 250 | 250 | 250 | 250 | 250 |
试剂五 | 200 | 200 | 200 | 200 | 200 |
试剂六 | 200 | - | 200 | - | 200 |
70%乙醇溶液 | - | 200 | - | 200 | - |
试剂七 | 100 | 100 | 100 | 100 | 100 |
混匀,42℃水浴准确反应40 min,冷水冷却,于525 nm处测定吸光值,分别记为A测定管、A对照管、A空白管1、A空白管2及A标准管。计算ΔA1测定管=(A测定管-A对照管)-(A空白管1-A空白管2)、ΔA1标准管=A标准管-A空白管1。 |
注意:加入试剂七时将枪头伸入液面以下加入,不可悬空滴加,否则会导致液体浑浊。空白管1、空白管2及标准管只需测定1-2次。
3. T-AsA含量测定
T-AsA含量测定操作表,按照操作表加入下列试剂:
试剂名称(μL) | 测定管 | 对照管 | 空白管1 | 空白管2 | 标准管 |
样本 | 50 | 50 | - | - | |
提取液 | - | - | 50 | 50 | - |
标准溶液 | - | - | 50 | ||
试剂一 | 50 | 50 | 50 | 50 | 50 |
试剂二 | 100 | 100 | 100 | 100 | 100 |
混匀,42℃水浴反应15 min。 | |||||
试剂三 | 50 | 50 | 50 | 50 | 50 |
混匀,室温静置1 min。 | |||||
试剂四 | 250 | 250 | 250 | 250 | 250 |
试剂五 | 200 | 200 | 200 | 200 | 200 |
试剂六 | 200 | - | 200 | - | 200 |
70%乙醇溶液 | - | 200 | - | 200 | - |
试剂七 | 100 | 100 | 100 | 100 | 100 |
混匀,42℃水浴准确反应40 min,冷水冷却,于525 nm处测定吸光值,分别记为A测定管、A对照管、A空白管1、A空白管2及A标准管。计算ΔA2测定管=(A测定管-A对照管)-(A空白管1-A空白管2)、ΔA2标准管=A标准管-A空白管1。 |
注意:加入试剂七时将枪头伸入液面以下加入,不可悬空滴加,否则会导致液体浑浊。空白管1、空白管2及标准管只需测定1-2次。
三、 AsA /T-AsA含量计算公式
a、AsA含量计算
(1)按样本质量计算
AsA(nmol/g 质量) =(C标准液×ΔA1测定管÷ΔA1标准管×V样)÷(W×V样÷V样总)
=500×ΔA1测定管÷ΔA1标准管÷W
(2)按细胞数量计算
AsA(nmol/104 cell) =(C标准液×ΔA1测定管÷ΔA1标准管×V样)÷(细胞数量×V样÷V样总)
=500×ΔA1测定管÷ΔA1标准管÷细胞数量
(3)按液体体积计算
AsA (nmol/mL) =C标准液×ΔA1测定管÷ΔA1标准管×2=1000×ΔA1测定管÷ΔA1标准管
C标准液:标准品的浓度,500 nmol/mL;V样总:提取离心后上清液体积,1.0 mL;V样:加入反应体系中上清液体积,0.05 mL;W:样本质量,g;2:稀释倍数,(500μL液体+500μL提取液)÷500μL液体=2。
b、T-AsA含量计算
(1)按样本质量计算
T-AsA(nmol/g 质量) =(C标准液×ΔA2测定管÷ΔA2标准管×V样)÷(W×V样÷V样总)
=500×ΔA2测定管÷ΔA2标准管÷W
(2)按细胞数量计算
T-AsA(nmol/104 cell) =(C标准液×ΔA2测定管÷ΔA2标准管×V样)÷(细胞数量×V样÷V样总)
=500×ΔA2测定管÷ΔA2标准管÷细胞数量
(3)按液体体积计算
T-AsA (nmol/mL) =C标准液×ΔA2测定管÷ΔA2标准管×2=1000×ΔA2测定管÷ΔA2标准管
C 标准液:标准品的浓度,500 nmol/mL;V 样总:提取离心后上清液体积,1.0 mL;V 样:加入反应体系中上清液体积,0.05 mL;W:样本质量,g;2:稀释倍数,(500μL液体+500μL提取液)÷500μL液体=2。
c、DHA含量计算
DHA含量=T-AsA含量-AsA含量
(1)按样本质量计算
DHA (nmol/g 质量) = 500×(ΔA2测定管÷ΔA2标准管-ΔA1测定管÷ΔA1标准管)÷W
(2)按细胞数量计算
DHA (nmol/104 cell) =500×(ΔA2测定管÷ΔA2标准管-ΔA1测定管÷ΔA1标准管)÷ 细胞数量
(3)按液体体积计算
DHA (nmol/mL) =1000×(ΔA2 测定管÷ΔA2标准管-ΔA1测定管÷ΔA1标准管)
注意事项:
1. 加入试剂七时将枪头伸入液面以下加入,不可悬空滴加,否则会导致液体浑浊。
2. 空白管1、空白管2及标准管只需测定1-2次。
3. A大于1时,建议将样本用提取液稀释后再进行测定,并在计算时乘以相应的稀释倍数。
4. 本试剂盒可单独用于检测样本中AsA或T-AsA含量,也可在同时检测AsA与T-AsA含量后计算DHA含量。
5. 样本提取后当天检测。
实验实例:
1、取0.1g冬枣进行样本处理,按照测定步骤操作,测得计算ΔA1测定管=(A测定管-A对照管)-(A空白管1-A空白管2)=(0.44-0.019)-(0.025-0.009)=0.402、ΔA1标准管=A标准管-A空白管1=0.341-0.024=0.317,ΔA2测定管=(A测定管-A对照管)-(A空白管1-A空白管2)=(0.591-0.020)-(0.024-0.008)=0.555、ΔA2标准管=A标准管-A空白管1=0.375-0.024=0.351,按照样本质量分别计算AsA含量及T-AsA含量得:
AsA(nmol/g 质量)=500×ΔA1测定管÷ΔA1标准管÷W=6340.7 nmol/g 质量
T-AsA(nmol/g 质量) =500×ΔA2测定管÷ΔA2标准管÷W=7905.9 nmol/g 质量。
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