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GU氨酸合成酶(GOGAT)活性检测试剂盒说明书
紫外分光光度法
货号:BC0070
规格:50T/48S
产品组成:使用前请认真核对试剂体积与瓶内体积是否一致,有疑问请及时联系索莱宝工作人员。
溶液的配制:
1、 工作液的配制:取试剂二、试剂三、试剂四各一支加入30 mL试剂一中溶解,现用现配,可分装后-20℃保存,避免反复冻融。
产品说明:
GOGAT主要存在于原核生物、酵母菌及高等植物非绿色组织的前质体中,和GU氨酰胺合成酶(GS)共同构成GS/GOGAT循环,参与氨同化的调控。
GOGAT以NADH为电子供体,催化GU氨酰胺的氨基转移到α-酮戊二酸形成两分子的GU氨酸,NADH在340nm吸光度的下降速率可以反映GOGAT活性大小。
注意:实验之前建议选择2-3个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。
需自备的仪器和用品:
紫外分光光度计、台式离心机、水浴锅、可调式移液器、1mL石英比色皿、研钵/匀浆器、冰和蒸馏水。
操作步骤:
一、样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献)
1、细菌或培养细胞:先收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;按照细菌或细胞数量(104个):提取液体积(mL)为500~1000:1的比例(建议500万细菌或细胞加入1mL提取液),超声波破碎细菌或细胞(冰浴,功率200W,超声3s,间隔10s,重复30次);10000g 4℃离心10min,取上清,置冰上待测。
2、组织:按照组织质量(g):提取液体积(mL)为1:5~10的比例(建议称取约0.1g组织,加入1mL提取液),进行冰浴匀浆。10000g 4℃离心10min,取上清,置冰上待测。
二、测定步骤
1、 紫外分光光度计预热30min以上,调节波长至340nm,蒸馏水调零。
2、 工作液提前配置,平衡至室温。
3、 样本测定
试剂名称(μL) | 测定管 |
工作液 | 900 |
样本 | 100 |
混匀,加样本的同时开始计时,在340 nm波长下记录20秒时的初始吸光度A1,比色后迅速将比色皿连同反应液一起放入25℃水浴或培养箱中准确反应5分钟;迅速取出比色皿并擦干,340nm下比色,记录5分20秒时的吸光度A2,计算ΔA=A1-A2。 |
三、GOGAT活性计算
(1)按样本蛋白浓度计算:
单位的定义:每mg组织蛋白每分钟消耗1nmol的NADH定义为一个酶活力单位。
GOGAT活性(U/mg prot)=[ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(V样×Cpr) ÷T=321.5×ΔA÷Cpr
(2)按样本质量计算:
单位的定义:每g组织每分钟消耗1nmol NADH定义为一个酶活力单位。
GOGAT活性(U/g 质量)=[ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(W ×V样÷V样总) ÷T=321.5×ΔA÷W
(3)按细菌或细胞数量计算:
单位的定义:每1万个细菌或细胞每分钟消耗1nmol NADH定义为一个酶活力单位。
GOGAT活性(U/104 cell)=[ΔA×V反总÷(ε×d)×109]÷(500×V样÷V样总) ÷T=0.643×ΔA
V反总:反应体系总体积,10-3L;ε:NADH摩尔消光系数,6.22×103L/mol/cm;d:比色皿光径,1cm;V样:加入样本体积,0.1mL;V样总:加入提取液体积,1mL;T:反应时间,5min;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL;W:样本质量,g;500:细菌或细胞总数,500万;109:单位换算系数,1mol =109nmol。
注意事项:
1、测定期间样本在冰上放置,以免变性和失活。
2、最好两个人同时做此实验,一个人比色,一个人计时,以保证实验结果的准确性。
3、当A1大于1.5或者ΔA大于0.6时,建议将样本用蒸馏水稀释后测定,当ΔA过小时,可以延长酶促反应时间(10min或15min)或者加大加入的样本体积进行测量。
4、由于提取液中含有一定浓度的蛋白(约1mg/mL),所以在测定样品蛋白浓度时需要减去提取液本身的蛋白含量。
实验实例:
1、 取0.1g红豆芽加入1mL提取液进行匀浆研磨,取上清后按照测定步骤操作,测得计算ΔA= A1-A2=1.23-1.067=0.163,按样本质量计算酶活得:
GOGAT活性(U/g 质量)=321.5×ΔA÷W=321.5×0.163÷0.1=524 U/g 质量。
2、 取0.1g稗草加入1mL提取液进行匀浆研磨,取上清后按照测定步骤操作,测得计算ΔA= A1-A2=1.416-1.404=0.012,按样本质量计算酶活得:
GOGAT活性(U/g 质量)=321.5×ΔA÷W=321.5×0.012÷0.1=38.58 U/g 质量。
相关发表文献:
[1] Fei Ding,Qiannan Hu,Meiling Wang,et al. Knockout of SlSBPASE Suppresses Carbon Assimilation and Alters Nitrogen Metabolism in Tomato Plants. International Journal of Molecular Sciences. December 2018;(IF4.183)
[2] Jie Wang,Wei Zhou,Hui Chen,et al. Ammonium Nitrogen Tolerant Chlorella Strain Screening and Its Damaging Effects on Photosynthesis. Frontier in Immunology. January 2019;(IF4.259)
[3] Meng L, Li W, Zhang S, et al. Effects of sucrose amendment on ammonia assimilation during sewage sludge composting[J]. Bioresource technology, 2016, 210: 160-166.
参考文献:
[1] del Pilar Cordovilla M, Pérez J, Ligero F, et al. Partial purification and characterization of NADH-glutamate synthase from faba bean (Vicia faba) root nodules[J]. Plant science, 2000, 150(2): 121-128.
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