产品简介
储存条件
2-8℃
中文名称
植物组织果糖含量测试盒 糖代谢
有效期
6个月
单位
盒
英文名称
Plant Tissue Fructose Content Assay Kit
检测方法
可见分光光度法 Spectrophotometer
规格
50T/48S
详细介绍
酰基转移酶(AAT)活性检测试剂盒说明书可见分光光度法注意:本产品试剂有所变动,请注意并严格按照该说明书操作。货号:BC2350规格:10T/9S产品组成:使用前请认真核对试剂体积与瓶内体积是否一致,有疑问请及时联系索莱宝工作人员。试剂名称 | 规格 | 保存条件 |
提取液 | 液体15 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
试剂一 | 液体10 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
试剂二 | 粉剂×1支 | -20℃保存 |
试剂三 | 液体1.5 mL×1支 | 2-8℃保存 |
试剂四 | 液体1mL×1支 | 2-8℃保存 |
溶液的配制:提取液:内含不溶物,使用前摇匀;
试剂二:临用前加蒸馏水1mL充分溶解,未用完的试剂2-8℃可以保存2周;
产品说明:AAT是一个多功能蛋白大家族,主要负责催化生物体内各种酰基化和去酰基化反应,在基因表达、代谢和信号传导中具有重要作用。AAT催化乙酰CoA转移乙酰基到丁醇,同时还原DTNB生成TNB;TNB在412nm有吸收峰,测定412nm吸光度增加速率,来计算AAT活性。注意:实验之前建议选择2-3个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。需自备的仪器和用品:可见分光光度计、台式离心机、水浴锅/恒温培养箱、可调式移液器、1mL玻璃比色皿、研钵/匀浆器、冰和蒸馏水。操作步骤:一、样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献)1、组织样本:按照组织质量(g):提取液体积(mL)为1:5~10的比例(建议称取约0.1g组织,加入1mL提取液),进行冰浴匀浆。4℃,15000 g离心20min,取上清液待测。2、血清(浆)样本:直接检测。(若液体有浑浊则离心后进行测定)二、测定步骤分光光度计预热30min 以上,调节波长至412nm,蒸馏水调零。
试剂一在37℃水浴保温20min以上。
样本测定:
试剂名称(μL) | 空白管 | 测定管 |
蒸馏水 | 100 | - |
上清液 | - | 100 |
试剂一(预热) | 700 | 700 |
试剂二 | 50 | 50 |
试剂三 | 100 | 100 |
试剂四 | 50 | 50 |
将上述试剂按顺序加入1mL 玻璃比色皿中,加试剂四的同时开始计时,充分吹打混匀,在412nm波长下记录第10s时的初始吸光度A1和130s后的吸光值A2,计算ΔA空=A2空-A1空、ΔA测=A2测-A1测、ΔA=ΔA测-ΔA空。空白只需做1-2次。三、AAT活性计算1、按样本蛋白浓度计算单位的定义:37℃中每mL反应体系下每毫克蛋白每分钟催化吸光值变化0.001个单位为1个酶活单位。AAT (U/mg prot) =ΔA÷0.001÷(Cpr×V样) ÷T= 5000×ΔA÷Cpr此法需要自行测定样本蛋白质浓度。2、按样本质量计算单位的定义:37℃中每mL反应体系下每克组织每分钟催化吸光值变化0.001个单位为1个酶活单位。AAT (U/g 质量) =ΔA÷0.001÷(V样÷V样总×W) ÷T=5000×ΔA÷W3、按血清体积计算单位的定义:37℃中每mL反应体系下每mL血清每分钟催化吸光值变化0.001个单位为1个酶活单位。AAT (U/mL 血清) =ΔA÷0.001÷V样÷T=5000×ΔACpr:上清液蛋白浓度,mg/mL,需要另外测定;V样:加入反应体系中上清液体积,0.1mL;W:样本质量,g;V样总:提取液体积,1mL;T:反应时间,2min。注意事项:当吸光值大于1时,建议稀释后测量。
如果ΔA测小于0.01,可以延长反应时间,如测定10s和310s的吸光度,计算时相应修改计算公式中反应时间。
实验实例:取0.1g肾脏加入1mL提取液进行样本处理,取上清后稀释4倍后按测定步骤操作,测得ΔA空=A2空-A1空=0.105-0.101=0.004、ΔA测=A2测-A1测=0.665-0.479=0.186、ΔA=ΔA测-ΔA空=0.186-0.004=0.182,按样本质量计算酶活得:AAT (U/g 质量) =5000×ΔA÷W×4(稀释倍数)=36400 U/g 质量。
取兔血清直接按照测定步骤操作,测得ΔA空=A2空-A1空=0.105-0.101=0.004、ΔA测=A2测-A1测0.622-0.521=0.101、ΔA=ΔA测-ΔA空=0.101-0.004=0.097,按血清体积计算酶活得:AAT (U/mL 血清) =5000×ΔA=5000×0.097=485 U/mL 血清。
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