Yeasen/翌圣生物 品牌
生产厂家厂商性质
上海市所在地
产品信息
产品名称 | 产品编号 | 规格 | 储存 | 价格(元) |
Hieff® qPCR SYBR Green Master Mix (Low Rox Plus) 实时荧光定量qPCR预混液(SYBR Green Mix) | 11202ES03 | 1 mL | -20℃避光 | 180.00 |
11202ES08 | 5×1 mL | -20℃避光 | 498.00 | |
11202ES50 | 50×1 mL | -20℃避光 | 7200.00 | |
11202ES60 | 100×1 mL | -20℃避光 | 12877.00 |
产品描述
Hieff® qPCR SYBR Green Master Mix实时荧光定量qPCR预混液(SYBR Green Mix)(Low Rox Plus)是2×实时定量PCR扩增的预混合溶液。Mix中含有热启动Hieff® DNA Polymerase、SYBR Green I、dNTPs、Mg2+及Low Rox。使用时,仅需在扩增体系中加入模板和引物即可进行实时荧光定量PCR,大大简化操作过程,降低污染几率。
本品采用的DNA聚合酶配体可以随温度变化实时调节DNA聚合酶活性。配方添加了有效抑制非特异性PCR扩增的因子和提升PCR反应扩增效率的因子,使定量PCR可以在宽广的定量区域内获得良好的线性关系。
适用机型
Applied Biosystems: 7500, 7500 Fast, ViiA7, QuantStudio Dx, QuantStudio3 and 5, QuantStudio 6,7,12k Flex;
Stratagene: MX3000P, MX3005P, MX4000.
运输与保存方式
冰袋运输。-20℃避光储存,有效期18个月。
本品避免反复冻融。产品中含有荧光染料SYBR Green I,保存或配制反应体系时需避免强光照射。
注意事项
1. 推荐使用本公司cDNA合成试剂盒(货号:11123ES),以有效去除RNA样品中残留的基因组。
2. 解冻后Master Mix可能出现絮状物质,4℃放置并上下颠倒混匀至溶液澄清,不影响试剂性能。
3. 为了您的安全和健康,请穿实验服并佩戴一次性手套操作。
4.本产品仅作科研用途!
反应体系(推荐冰上配制)
组分 | 体积(μl) | 体积(μl) | 终浓度 |
Hieff® qPCR SYBR Green Master Mix (Low Rox Plus) | 25 | 10 | 1× |
Forward Primer (10μM) | 1 | 0.4 | 0.2μM |
Reverse Primer (10μM) | 1 | 0.4 | 0.2μM |
模板DNA | X | X | - |
无菌超纯水 | to 50 | to 20 | - |
【注】: 使用前务必充分混匀,避免剧烈震荡产生过多气泡。
a) 引物浓度:通常引物终浓度为0.2μM,也可以根据情况在0.1-1.0μM之间进行调整。
b) 模板浓度:如模板类型为未稀释cDNA原液,使用体积不应超过qPCR反应总体积的1/10。
c) 模板稀释:cDNA原液建议5-10倍稀释,最佳模板加入量以扩增得到的CT值在20-30个循环为好。
d) 反应体系:推荐使用20μl或50μl,以保证目的基因扩增的有效性和重复性。
e) 体系配制:请于超净工作台内配制,并使用无核酸酶残留的枪头、反应管;推荐使用带滤芯的枪头。避免交叉污染和气溶胶污染。
扩增程序(两步法) 扩增程序(三步法)
循环步骤 | 温度 | 时间 | 循环数 | 循环步骤 | 温度 | 时间 | 循环数 | |
预变性 | 95℃ | 5min | 1 | 预变性 | 95℃ | 5min | 1 | |
变性 | 95℃ | 10sec | 40 | 变性 | 95℃ | 10sec | 40 | |
退火/延伸 | 60℃ | 30sec★ | 退火 | 55-60℃ | 20sec | |||
延伸 | 72℃ | 20sec★ | ||||||
熔解曲线阶段 | 仪器默认设置 | 1 | 熔解曲线阶段 | 仪器默认设置 | 1 |
【注】高特异性可选择两步法,高效率扩增可选择三步法。
a) 预变性时间:根据不同模板和引物的具体情况可适当缩短至2min。
b) 退火温度和时间:请根据引物和目的基因的长度进行调整。
c) 荧光信号采集(★):请按照仪器使用说明书要求进行实验程序设置,几种常见仪器的时间设定如下:
30sec以上:Applied Biosystems: StepOne, StepOne Plus, 7500 Fast;Roche Applied Science: LightCycler 480;Bio-Rad: CFX96
31sec以上:Applied Biosystems: 7300
34sec以上:Applied Biosystems: 7500
d) 熔解曲线:通常情况下可以使用仪器默认程序。
结果分析
定量实验至少需要三个生物学重复。反应结束后需要确认扩增曲线及熔解曲线。
1) 扩增曲线:标准扩增曲线为S型。
Ct值落在20-30之间时,定量分析最准确;
Ct值小于10,需要将稀释模板后,重新进行实验;
Ct值介于30-35之间时,需要提高模板浓度,或者增大反应体系的体积,以提高扩增效率,保证结果分析的准确性;
Ct值大于35时,检测结果无法定量分析基因的表达量,但可用于定性分析。
2) 熔解曲线:
熔解曲线单峰,表明反应特异性好可以进行定量结果分析;若熔解曲线出现双峰或者多峰,则不能进行定量分析。
熔解曲线出现双峰,需要通过DNA琼脂糖凝胶电泳判断非目标峰是引物二聚体还是非特异性扩增。
如果是引物二聚体,建议降低引物浓度,或者重新设计扩增效率高的引物。
如果是非特异性扩增,请提高退火温度,或者重新设计更高特异性的引物。
引物设计指南
1. 推荐引物长度25bp左右。扩增产物长度150bp为佳,可以在100bp-300bp内选择。
2. 正向引物和反向引物的Tm值相差不宜超过2℃。引物Tm值60℃-65℃为佳。
3. 引物碱基分布要均匀,避免出现连续的4个相同碱基,GC含量控制在50%左右。3’端最后一个碱基最好为G或C。
4. 引物内部或者正反两条引物间最好避免出现有3个碱基以上的互补序列。
5. 引物特异性需要用NCBI BLAST程序进行核对。避免引物3’端有2个碱基以上的非特异性互补。
6. 设计完成的引物需要进行扩增效率的检测,只有具备相同扩增效率的引物才可用于定量比较分析。
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