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髓过氧化物酶(MPO)活性检测试剂盒说明书
可见分光光度法
货号:BC5710
规格:50T/24S
产品组成:使用前请认真核对试剂体积与瓶内体积是否一致,有疑问请及时联系索莱宝工作人员。
试剂名称 | 规格 | 保存条件 |
试剂一 | 液体60 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
试剂二 | 粉剂×2瓶 | 2-8℃保存 |
试剂三 | 液体4 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
试剂四 | 液体1.5 mL×1支 | 2-8℃保存 |
试剂五 | 液体0.1 mL×1支 | 2-8℃保存 |
试剂六 | 液体1 mL×1支 | 2-8℃保存 |
溶液的配制:
1. 试剂二:临用前取一瓶试剂二加入15mL试剂一,可37℃加热促进溶解,2-8℃可保存2周;
2. 试剂三:低温下试剂会出现析出凝固现象,临用前需37℃加热至澄清透明状态;
3. 工作液:临用前根据样本量按照试剂一:试剂四:试剂五=5.28mL:220μL:5.5μL(5.5mL,6S)的比例配制,现用现配。
产品说明:
髓过氧化物酶(myeloperoxidase, MPO)是一种由活化的中性粒细胞、单核-巨噬细胞分泌的白细胞酶,主要存在于中性粒细胞和单核-巨噬细胞的嗜苯胺蓝颗粒中。当白细胞被激活后,MPO释放到吞噬泡和血浆,在特定条件下诱导氧化应激和组织损伤,是系统炎症和氧化应激的标志物。
MPO催化H2O2分解,同时将邻联茴香胺氧化生成有色物质,在460nm处有特征吸收峰,颜色深浅与MPO活性成线性关系。
注意:实验之前建议选择2-3个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。
需自备的仪器和用品:
可见分光光度计、低温离心机、分析天平、水浴锅/恒温培养箱、1mL玻璃比色皿、可调式移液枪、研钵/匀浆器/细胞超声破碎仪、冰和蒸馏水。
操作步骤:
一、 样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献)
1. 组织样本:按质量(g):试剂二体积(mL)=1:5~10比例加入试剂二(建议称取0.1g样本,加入1.0mL试剂二),冰浴匀浆后,于4℃,12000g,离心10min,弃沉淀,取上清液置于冰上待测。
2. 细胞样本:按细胞数量(106):试剂二体积(mL)=5~10:1的比例加入试剂二(建议5×106个细胞加入1.0mL试剂二),冰浴超声破碎细胞(功率200W,超声3s,间隔7s,总时间3min),然后于4℃,12000g,离心10min,弃沉淀,取上清液置于冰上待测。
3. 液体样本:按液体体积(mL):试剂二体积(mL)=1:1的比例加入试剂二(相当于稀释2倍),混匀,于4℃,12000g,离心10min,弃沉淀,取上清液置于冰上待测。(若测定数值较小,可以调整比例进行前处理,例如2:1或3:1)
二、 测定步骤
1.可见分光光度计预热30min以上,调节波长至460nm,蒸馏水调零。
2.在2mL EP管按下表顺序加样:
试剂名称(μL) | 测定管 | 对照管 |
样本 | 60 | 60 |
试剂三 | 60 | 60 |
工作液 | 900 | - |
蒸馏水 | - | 900 |
混匀,37℃反应30min | ||
试剂六 | 15 | 15 |
混匀,60℃反应10min,取1mL反应液于1mL玻璃比色皿中测定460nm处各管吸光值,分别记为A测定和A对照,计算ΔA=A测定-A对照。每个测定管需设置一个对照管。 注:温度较低时,反应液可能出现浑浊或凝固,此时需37℃加热至反应液澄清透明方可进行测定。 |
三、MPO活性计算
1. 按样本蛋白浓度计算
单位的定义:每mg组织蛋白在37℃反应体系中每小时催化产生1μmol氧化型邻联茴香胺定义为一个酶活单位。
MPO活性(U/mg prot)=ΔA÷(ε×d)×V反总÷(Cpr×V样) ÷T=3.053×ΔA÷Cpr
2. 按样本质量计算
单位的定义:每g组织在37℃反应体系中每小时催化产生1μmol氧化型邻联茴香胺定义为一个酶活单位。
MPO活性(U/g 质量)=ΔA÷(ε×d)×V反总÷(W÷V提取×V样) ÷T= 3.053×ΔA÷W
3. 按细胞数目计算
单位的定义:每106个细胞在37℃反应体系中每小时催化产生1μmol氧化型邻联茴香胺定义为一个酶活单位。
MPO活性(U/106 cell)=ΔA÷(ε×d)×V反总÷(N÷V提取×V样) ÷T= 3.053×ΔA÷N
4. 按液体体积计算
单位的定义:每mL液体在37℃反应体系中每小时催化产生1μmol氧化型邻联茴香胺定义为一个酶活单位。
MPO活性(U/mL)=ΔA÷(ε×d)×V反总÷V样×F÷T=6.106×ΔA
ε:氧化型邻联茴香胺消光系数,11.3mL/μmol/cm;d:光径,1cm;V反总:反应总体积,1.035mL;V样:加入样本体积,0.06mL;V提取:组织/细胞样本处理时加入试剂二的体积,1mL;F:液体前处理稀释倍数,2;Cpr:样本蛋白浓度,mg/mL;W:样本质量,g;N:细胞数目,以106计;T:酶促反应时间,30min=0.5h。
注意事项:
1. 建议每次实验前查看试剂二和试剂三是否澄清透明,若不澄清透明,需37℃加热至溶液澄清透明方可使用。
2. 如果∆A小于0.01或测定管吸光值接近对照管,可以增加样本量或者延长37℃酶促反应时间后再进行测定;如果∆A测定大于0.5或A测定大于1.5,建议将样本匀浆后的上清液用试剂二适当稀释后再进行测定。注意同步修改计算公式。
实验实例:
1. 取0.1029g小鼠肺脏样本,加入1mL试剂二进行冰浴匀浆,离心后取上清,按照测定步骤操作,用1mL玻璃比色皿测得计算:ΔA=A测定-A对照=0.367-0.045=0.322,按样本质量计算得:
MPO活性(U/g 质量)=3.053×ΔA÷W = 9.554 U/g 质量。
2. 取4×106个KB细胞,加入1mL试剂二进行冰浴超声破碎,离心后取上清,按照测定步骤操作,用1mL玻璃比色皿测得计算:ΔA=A测定-A对照=0.050-0.000=0.050,按样本细胞数目计算得:
MPO活性(U/106 cell)=3.053×ΔA÷N = 0.038 U/106 cell。
3. 取0.5mL马血清样本,加入0.5mL试剂二,混匀,离心后取上清,按照测定步骤操作,用1mL玻璃比色皿测得计算:ΔA=A测定-A对照=0.099-0.002=0.097,按液体体积计算得:
MPO活性(U/mL)=6.106×ΔA = 0.592 U/mL。
参考文献:
[1] Bradley PP, Priebat DA, Christensen RD. et al. Measurement of cutaneous inflammation: estimation of neutrophil content with an enzyme marker [J]. The Journal of Investigative Dermatology, 1982, 78(3): 206-209.
[2] Krawisz J E, Sharon P, Stenson W F. Quantitative assay for acute intestinal inflammation based on myeloperoxidase activity [J]. Gastroenterology, 1984, 87(6): 1344-1350.
[3] Tatjana Momić, Zoran Vujčić, Vesna Vasić. Kinetics of inhibition of peroxidase activity of myeloperoxidase by quercetin [J]. International Journal of Chemical Kinetics, 2008, 40(7): 384-394.
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