超氧化物歧化酶分型活性检测试剂盒 抗逆

BC5250-50T/24S超氧化物歧化酶分型活性检测试剂盒 抗逆

参考价: 面议

具体成交价以合同协议为准
2024-04-19 09:30:53
564
属性:
CAS:详询;纯度:详询;分子量:详询;分子式:详询;供货周期:现货;规格:50T/24S;货号:BC5250;应用领域:环保,化工,生物产业,农业,综合;主要用途:超氧化物歧化酶分型活性检测;
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产品属性
CAS
详询
纯度
详询
分子量
详询
分子式
详询
供货周期
现货
规格
50T/24S
货号
BC5250
应用领域
环保,化工,生物产业,农业,综合
主要用途
超氧化物歧化酶分型活性检测
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北京索莱宝科技有限公司

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产品简介

超氧化物歧化酶分型活性检测试剂盒 抗逆
单位

有效期
6个月
储存条件
2-8℃
英文名称
Superoxide Dismutase (SOD) Typed Activity Assay Kit (WST colorimetry)
检测方法
可见分光光度法 Spectrophotometer
规格
50T/24S

详细介绍

超氧化物歧化酶(SOD)分型活性检测试剂盒(WST法)说明书

Cu-ZnMn、总SOD活性

可见分光光度法

注意:本产品试剂有所变动,请注意并严格按照该说明书操

货号:BC5250

规格:50T/24S

产品组成:使用前请认真核对试剂体积与瓶内体积是否一致,有疑问请及时联系索莱宝工作人员。

试剂名称

规格

保存条件

提取液一

液体60 mL×1

2-8℃保存

提取液二

液体10 mL×1

2-8℃保存

试剂一

液体25 mL×1

2-8℃保存

试剂二

液体75 μL×1

2-8℃保存

试剂三

液体21 mL×1

2-8℃保存

试剂四

液体0.8 mL×1

2-8℃保存

溶液的配制:

1、 试剂二:使用前先使用掌上离心机离心至管底再吹打混匀;

2、 试剂二工作液:根据样本数量按试剂二:蒸馏水=5μL395μL(共400μL可做4Cu-Zn-SOD样本或2Mn-SOD样本)的比例配制试剂二工作液,现用现配;

3、 试剂四工作液:根据样本量按试剂四蒸馏水=20μL180μL(共200μL,约4T)的比例配制试剂四工作液,现用现配。

产品说明:

SODEC 1.15.1.1)广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞中,根据其辅基结合金属离子的不同,可分为铜锌SOD、锰SOD等类型,铜锌SOD主要位于细胞质,锰SOD主要位于线粒体。SOD催化超氧化物阴离子发生歧化作用,生成H2O2O2SOD不仅是超氧化物阴离子清除酶,也是H2O2主要生成酶,在生物抗氧化系统中具有重要作用。

通过黄*呤及黄*呤氧化酶反应系统产生超氧阴离子(O2-)O2-可与WST-1反应生成水溶性黄色甲臜,后者在450nm处有吸收峰;SOD可清除O2-,从而抑制了甲臜的形成;反应液黄色越深,说明SOD活性愈低,反之活性越高。样本经过处理后铜锌SOD活性不变,锰SOD活性丧失。通过测定总SOD活性和铜锌SOD活性,可计算得到锰SOD活性。

注意:实验之前建议选择2-3个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。

 

需自备的仪器和用品:

可见分光光度计、台式离心机、漩涡混匀仪/振荡器、水浴锅/恒温培养箱、电子天平、可调式移液器、1mL玻璃比色皿、研钵/匀浆器/细胞超声破碎仪、冰和蒸馏水。

操作步骤:

一、样本处理

1. SOD活性测定

1) 细菌或培养细胞样本:收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清,按照细菌或细胞数量(104个):提取液一体积(mL=500-1000:1的比例(建议500万细菌或细胞加入1mL提取液一)超声波破碎细菌或细胞(冰浴,功率200W,超声3s,间隔10s,重复30次),8000g 4℃离心10min,取全部上清,部分用于测定总SOD活性。

2) 组织样本:按照组织质量(g):提取液一体积(mL)为1:5-10的比例(建议称取约0.1g组织,加入1mL提取液一)进行冰浴匀浆;8000g 4℃离心10min取全部上清,部分用于测定总SOD活性

3) 血清(浆)样本:直接用于测定总SOD活性若有浑浊可离心后取上清进行测定。

2. 铜锌SOD活性测定

1) 取上一步提取得到的上清,按照上清体积(mL):提取液二体积(mL=2:3的比例(建议取0.2mL上清加入0.3mL提取液二)混合,震荡混匀1min4000g 4℃离心10min,取最上层的上清用于测定铜锌SOD活性,此上清即样本处理上清,上清中铜锌SOD活性不变,锰SOD活性丧失。

注:上清和提取液二混匀离心后分为3层,取最上层溶液测定即可。

2) 按照蒸馏水体积(mL):提取液二体积(mL=2:3的比例(建议取0.2mL蒸馏水加入0.3mL提取液二)混合,震荡混匀1min4000g 4℃离心10min,取最上层的上清用于测定铜锌SOD活性的空白管,此上清即蒸馏水处理上清

二、测定步骤

1. 可见分光光度计预热30min以上,调节波长至450nm,蒸馏水调零。

2. 测定前将试剂一、试剂三和试剂工作液37℃保温5min以上。

3. 样本测定(在EP管中按顺序加入下列试剂)

试剂名称(μL

SOD活性

铜锌SOD活性

测定管1

对照管1

空白管1

空白管2

测定管2

对照管2

空白管3

空白管4

90

90

-

-

-

-

-

-

样本处理上清

-

-

-

-

90

90

-

-

蒸馏水处理上清

-

-

-

-

-

-

90

90

试剂一

225

225

225

225

225

225

225

225

试剂二工作液

100

-

100

-

100

-

100

-

试剂三

175

175

175

175

175

175

175

175

蒸馏水

360

460

450

550

360

460

360

460

试剂四工作液

50

50

50

50

50

50

50

50

充分混匀,37水浴锅/恒温培养箱反应30min后,置于1mL玻璃比色皿测定450nm下的吸光度,空白管1、空白管2、空白管3和空白管4只需做1-2次,每个样本测定管需设置一个对照管。

 

SOD的记为A1测定、A1对照、A1空白、A2空白,计算ΔA1测定=A1测定-A1对照,ΔA1空白=A1空白-A2空白。

铜锌SOD的记为A2测定、A2对照、A3空白、A4空白,计算ΔA2测定=A2测定-A2对照,ΔA3空白=A3空白-A4空白。

三、 SOD活性计算

1、抑制百分率的计算:

SOD抑制百分率=(ΔA1空白-ΔA1测定) ÷ΔA1空白×100%

铜锌SOD抑制百分率=(ΔA3空白-ΔA2测定) ÷ΔA3空白×100%

尽量使样本的抑制百分率在30-70%范围内,越靠近50%越准确。如果计算出来的抑制百分率小于30%或大于70%,则通常需要调整加样量后重新测定。如果测定出来的抑制百分率偏高,则需适当稀释样本;如果测定出来的抑制百分率偏低,则需重新准备浓度比较高的待测样本或者提高加样表中的样本量,但需相应减少测定管和对照管中蒸馏水的体积。注意同步修改计算公式

2SOD酶活性单位:在上述黄*呤氧化酶偶联反应体系中抑制百分率为50%时,反应体系中的SOD酶活力定义为一个酶活力单位。

3SOD酶活性计算:

1)血清(浆)SOD活性(U/mL)=[抑制百分率÷(1-抑制百分率)×V反总]÷V×F

=11.11×抑制百分率÷(1-抑制百分率)×F

2)组织、细菌或培养细胞SOD活力计算:

A 按样本蛋白浓度计算

SOD活性 (U/mg prot)=[抑制百分率÷1-抑制百分率)×V反总V×Cpr×F

=11.11×抑制百分率÷(1-抑制百分率) ÷Cpr×F

B 按样本质量计算

SOD活性 (U/g 质量)=[抑制百分率÷(1 -抑制百分率)×V反总]÷(W×V÷V样总)×F

=11.11×抑制百分率÷(1-抑制百分率) ÷W×F

C 按细菌或细胞数量计算

SOD活力 (U/104 cell)= [抑制百分率÷(1-抑制百分率)×V反总]÷(500×V÷V样总)×F

=0.0222×抑制百分率÷(1-抑制百分率)×F

3 SOD活性=SOD活性-铜锌SOD活性

V反总:反应体系总体积,1mLV样:加入反应体系中样本的体积,0.09mLV样总:加入提取液体积,1mLCpr:样本蛋白质浓度,mg/mLW:样本质量,g500:细胞或细菌总数,500万,F:样本稀释倍数。

注意事项:

1、 样本和试剂二工作液使用时在冰上放置。

2、 样本较多时,可按表格配制测定管工作液和对照管工作液(包含试剂一、(试剂二工作液)、试剂三、蒸馏水),试剂四工作液必须最后加入。

3、 本试剂盒可做24个锰-SOD样本或者48个铜锌-SOD样本。

实验实例:

1. 0.1019g车前叶片加入1mL提取液一进行匀浆研磨,取上清稀释2倍,按照测定步骤操作,用玻璃比色皿

 

测得计算ΔA1测定= A1测定-A1对照=0.3454-0.0887=0.2567ΔA1空白=A1空白-A2空白=0.7898-0.0694 =0.7204,总SOD抑制百分率=(ΔA空白-ΔA测定) ÷ΔA空白×100%=64.367%;取0.2mL稀释2倍的上清,加入0.3mL提取液二,按照测定步骤操作,用玻璃比色皿测得计算ΔA2测定= A2测定-A2对照=0.7646-0.0683=0.6963ΔA3空白=A3空白-A4空白=1.2289-0.0580=1.1709,铜锌SOD抑制百分率=(ΔA空白-ΔA测定) ÷ΔA空白×100%=40.533%,按样本质量计算酶活得:

SOD活性U/g 质量)=11.11×抑制百分率÷(1-抑制百分率) ÷W×F =393.896 U/g 质量

铜锌SOD活性U/g 质量)=11.11×抑制百分率÷(1-抑制百分率) ÷W×F =148.628 U/g 质量

SOD活性U/g 质量)=393.896-148.628 =245.268 U/g 质量

2. 0.1104g兔脾脏加入1mL提取液一进行匀浆研磨,取上清稀释10倍,按照测定步骤操作,用玻璃比色皿测得计算ΔA1测定= A1测定-A1对照=0.3507-0.0699=0.2808ΔA1空白=A1空白-A2空白=0.7898-0.0694=0.7204,总SOD抑制百分率=(ΔA空白-ΔA测定) ÷ΔA空白×100%=61.022%;取0.2mL稀释10倍的上清,加入0.3mL提取液二,按照测定步骤操作,用玻璃比色皿测得计算ΔA2测定= A2测定-A2对照=0.7782-0.0543=0.7239ΔA3空白=A3空白-A4空白=1.2289-0.0580=1.1709,铜锌SOD抑制百分率=(ΔA空白-ΔA测定) ÷ΔA空白×100%=38.176%,按样本质量计算酶活得:

SOD活性U/g 质量)=11.11×抑制百分率÷(1-抑制百分率) ÷W×F =1575.453 U/g 质量

铜锌SOD活性U/g 质量)=11.11×抑制百分率÷(1-抑制百分率) ÷W×F =621.404 U/g 质量

SOD活性U/g 质量)=1575.453-621.404=954.049 U/g 质量

3. 1000万细胞加入1mL提取液一进行前处理并按测定步骤操作,反应体系中样本量加倍,用玻璃比色皿测得计算ΔA1测定= A1测定-A1对照=0.3761-0.1271=0.2490ΔA1空白=A1空白-A2空白=0.8318-0.0608=0.7710,总SOD抑制百分率=(ΔA空白-ΔA测定) ÷ΔA空白×100%=67.704%;取0.2mL上清,加入0.3mL提取液二,按照测定步骤操作,用玻璃比色皿测得计算ΔA2测定= A2测定-A2对照=0.5994-0.0590=0.5404ΔA3空白=A3空白-A4空白=1.0406-0.0545=0.9861,铜锌SOD抑制百分率=(ΔA空白-ΔA测定) ÷ΔA空白×100%=45.201%,修改计算公式后按细胞数量计算酶活得:

SOD活性U/104 cell=0.0056×抑制百分率÷(1-抑制百分率) ÷W×F =0.012 U/104 cell

铜锌SOD活性U/104 cell=0.0056×抑制百分率÷(1-抑制百分率) ÷W×F =0.005 U/104 cell

SOD活性U/104 cell=0.012-0.005=0.007 U/104 cell

参考文献:

[1] Peskin A V, Winterbourn C C. A microtiter plate assay for superoxide dismutase using a water-soluble tetrazolium salt (WST-1) [J]. Clinica chimica acta, 2000, 293(1-2):157-166.

[2] Hou Z, Zhao L, Wang Y, et al. Purification and characterization of superoxide dismutases from sea buckthorn and chestnut rose[J]. Journal of food science, 2019, 84(4): 746-753.

[3] Cristiana, F, Elena, A. and Nina, Z. Superoxide Dismutase: Therapeutic Targets in SOD Related Pathology[J]. Health, 2014, 06(10):975-988.

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