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多酚氧化酶(PPO)活性检测试剂盒说明书
可见分光光度法
注意:本产品试剂有所变动,请注意并严格按照该说明书操作。
货号:BC0190
规格:50T/24S
产品组成:使用前请认真核对试剂体积与瓶内体积是否一致,有疑问请及时联系索莱宝工作人员。
试剂名称 | 规格 | 保存条件 |
提取液 | 液体30 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
粉剂一 | 粉剂×1瓶 | 2-8℃保存 |
试剂一 | 液体40 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
试剂二 | 液体10 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
溶液的配制:
提取液:临用前将粉剂一倒入提取液中,溶液为悬浊液,使用前需摇匀。
产品简介:
PPO主要存在于动物、植物、微生物和培养细胞中,是一种含铜的氧化酶,能使一元酚和二元酚氧化产生醌,从而引起褐化,与果蔬加工、茶叶品质和组培等密切相关。
PPO能够催化邻苯二酚产生邻苯二醌,后者在410nm有特征光吸收。
注意:实验之前建议选择2-3个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。
需自备的仪器和用品:
可见分光光度计、台式离心机、水浴锅、可调式移液器、1mL玻璃比色皿、研钵/匀浆器、冰和蒸馏水。
操作步骤:
一、样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献)
收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;按照每500万细菌或细胞加入1mL提取液,超声波破碎细菌或细胞(功率200W,超声3秒,间隔10秒,重复30次);8000g 4℃离心10分钟,取上清,置冰上待测。
称取约0.1g组织,加入1mL提取液进行冰浴匀浆。8000g 4℃离心10分钟,取上清,置冰上待测。
血清(浆):直接检测。若有浑浊请离心后去上清使用。
二、测定步骤
分光光度计预热30min以上,调节波长至410nm,蒸馏水调零。
样本测定(在EP管中依次加入下列试剂)
试剂名称(μL) | 测定管 | 对照管 |
试剂一 | 600 | 600 |
试剂二 | 150 | 150 |
样本 | 150 | - |
煮沸的样本 | - | 150 |
37℃(哺乳动物)或25℃(其它物种)中准确水浴10min后,迅速放入沸水中加热10min。冷却后,5000g,常温离心10min,收集上清,410nm处检测测定管和对照管吸光度,计算ΔA=A测定-A对照。
注意:每个测定管需要设置一个对照管,可以在不同对照管中加入不同样本的粗酶液,然后集中进行5min沸水浴处理。
三、PPO活性计算
(1)按样本蛋白浓度计算:
单位的定义:每分钟每mg组织蛋白在每mL反应体系中使410nm处吸光值变化0.01定义为一个酶活力单位。
PPO活性(U/mg prot)= ΔA÷0.01×V反总÷(Cpr×V样)÷T =60×ΔA÷Cpr
(2)按样本质量计算:
单位的定义:每分钟每g组织在每mL反应体系中使410nm处吸光值变化0.01定义为一个酶活力单位。
PPO活性(U/g 质量)=ΔA÷0.01×V反总÷(W÷V样总×V样)÷T =60×ΔA÷W
(3)按细菌或细胞数量计算:
单位的定义:每分钟每1万个细菌或细胞在每mL反应体系中使410nm处吸光值变化0.01定义为一个酶活力单位。
PPO活性(U/104 cell)= ΔA÷0.01×V反总÷(500÷V样总×V样)÷T =0.12×ΔA
V反总:反应体系总体积,0.9mL;V样:加入反应体系中样本体积,0.15mL;V样总:加入提取液体积,1mL;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL;W:样本质量,g;500:细菌或细胞数量,500万;T:反应时间,10min。
注意事项:
不同样本的多酚氧化酶最佳的反应温度略有差别,可在25-37℃之间进行调节。
相关发表文献:
Li B, Ding Y, Tang X, et al. Effect of L-Arginine on Maintaining Storage Quality of the White Button Mushroom (Agaricus bisporus)[J]. Food and Bioprocess Technology, 2019, 12(4): 563-574.
B Li,Y Ding, X Tang,et al. MTA1 promotes the invasion and migration of pancreatic cancer cells potentially through the HIF-α/VEGF pathway. Journal of Receptor and Signal Transduction Research. August 2018;(IF2.998)
参考文献:
González, Eva M, De Ancos B , Cano M P . Partial Characterization of Polyphenol Oxidase Activity in Raspberry Fruits[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 1999, 47(10):4068-4072.
Hong‐Wei Zhou, Feng X . Polyphenol oxidase from yali pear (Pyrus bretschneideri)[J]. Journal of the Science of Food & Agriculture, 1991, 57(3):307-313.
Tang W, Newton R J . Increase of polyphenol oxidase and decrease of polyamines correlate with tissue browning in Virginia pine (Pinus virginiana Mill.)[J]. plant science, 2004, 167(3):621-628.
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