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苹果酸合酶(MS)活性检测试剂盒说明书
可见分光光度法
货号:BC5760
规格:50T/24S
产品组成:使用前请认真核对试剂体积与瓶内体积是否一致,有疑问请及时联系索莱宝工作人员。
试剂名称 | 规格 | 保存条件 |
提取液 | 液体30 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
试剂一 | 液体40 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
试剂二 | 液体1.5 mL×1支 | 2-8℃保存 |
试剂三 | 粉剂×1支 | -20℃保存 |
试剂四 | 液体3 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
试剂五 | 液体15 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
试剂六 | 液体3 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
溶液的配制:
1、 试剂三:临用前加入1.5mL蒸馏水充分溶解,未用完的试剂-20℃分装保存4周,避免反复冻融。
产品说明:
苹果酸合酶(Malate Synthase,EC2.3.3.9)是属于转移酶中酰基转移酶的一类,主要存在于植物和微生物中。是乙醛酸循环的关键酶之一,在MS催化下乙醛酸与乙酰辅*A反应生成苹果酸。MS催化乙酰CoA和乙醛酸产生苹果酸,同时生成辅*A,辅*A使无色的DTNB转变成黄色的TNB,在412nm处有特征吸收峰,据此可以计算MS活性。
注意:实验之前建议选择2-3个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。
需自备的仪器和用品:
可见分光光度计、1mL玻璃比色皿、天平、低温离心机、水浴锅、研钵/匀浆器/细胞超声破碎仪、冰和蒸馏水。
操作步骤:
一、样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献)
1. 组织:按照组织质量(g):提取液体积(mL)为1:5~10的比例(建议称取约0.1g组织,加入1mL提取液)进行冰浴匀浆。12000g,4℃离心 10min,取上清置于冰上待测。
2. 细菌/细胞:按照细菌/细胞数量(106个):提取液体积(mL)为5~10:1的比例(建议5百万细菌/细胞加入1mL提取液),冰浴超声波破碎(功率200W,超声3秒,间隔7秒,总时间5min);然后12000 g,4℃离心10min,取上清置于冰上待测。
3. 培养上清等液体:直接检测,若有浑浊可以离心后取上清测定。
二、测定步骤
1、 可见分光光度计预热30min以上,调节波长至412nm,蒸馏水调零。
2、 试剂一25℃预热15min。
3、 操作表:(在1.5mL EP管中加入下列试剂)
(1)酶促反应
试剂名称(μL) | 对照管 | 测定管 |
试剂一 | 700 | 600 |
试剂二 | - | 50 |
试剂三 | - | 50 |
样本 | 250 | 250 |
充分混匀,25℃反应20min | ||
试剂四 | 50 | 50 |
充分混匀,4℃ 12000g离心5min,取上清于1.5mL EP 管中。 |
(2)显色反应
试剂名称(μL) | 对照管 | 测定管 |
上清液 | 700 | 700 |
试剂五 | 250 | 250 |
试剂六 | 50 | 50 |
充分混匀静置5min,测定412nm下的吸光度,分别记为A对照、A测定。计算ΔA=A测定-A对照。每个测定管需设一个对照管。 |
三、苹果酸合酶(MS)计算公式
1. 按样本蛋白浓度计算:
酶活定义:25℃下每mg组织蛋白在反应体系中每分钟催化产生1nmol TNB定义为一个酶活力单位。
MS活性(U/mg prot)=ΔA÷(ε×d)×V显色÷V上清液×V酶促÷(Cpr×V样)÷T×F =21×ΔA÷Cpr×F
2. 按样本质量计算:
酶活定义:25℃下每g组织在反应体系中每分钟催化产生1nmol TNB定义为一个酶活力单位。
MS活性(U/g 质量)=ΔA÷(ε×d)×V显色÷V上清液×V酶促÷(W÷V提取×V样)÷T×F =21×ΔA÷W×F
3. 按细菌/细胞计算:
酶活定义:25℃下每106个细菌/细胞在反应体系中每分钟催化产生1nmol TNB定义为一个酶活力单位。
MS活性(U/106 cell)=ΔA÷(ε×d)×V显色÷V上清液×V酶促÷(N÷V提取×V样)÷T×F =21×ΔA÷N×F
4. 按液体体积计算:
酶活定义:25℃下每mL液体在反应体系中每分钟催化产生1nmol TNB定义为一个酶活力单位。
MS活性(U/mL)=ΔA÷(ε×d)×V显色÷V上清液×V酶促÷V样÷T×F =21×ΔA÷N×F
ε:TNB摩尔消光系数,13.6×10-3mL/(nmol·cm);d:比色皿光径,1cm;V显色:显色反应总体积,1mL;V上清液:显色反应中上清液体积,0.7mL;V酶促:酶促反应总体积,1mL;V样:反应体系中加入的样本体积,0.25mL;V提取:加入提取液的体积,1mL;T:反应时间,20min;Cpr:样本蛋白浓度,mg/mL;W:样本质量,g;N:细菌或细胞总数,以106计;F:稀释倍数。
注意事项:
1. 测定过程中样本和所有试剂在冰上放置,以免变性和失活。
2. 最好两个人同时做此实验,一个人比色,一个人计时,以保证实验结果的准确性。
3. 若样本ΔA<0.01,可适当增大样本量重新提取或增大加样表样本体积(可同时降低试剂一体积保证总体积不变)后测定;若样本ΔA>1.0或A测定>1.5,可用蒸馏水稀释上清液后测定,注意同步修改计算公式中的稀释倍数。
实验实例:
1、 取0.1141g霉菌加入1mL提取液进行冰浴匀浆,取上清后按照测定步骤操作,用1mL玻璃比色皿测得ΔA=A测定-A对照=0.338-0.270=0.068,按样本质量计算MS活性得:
MS活性(U/g 质量)=21×ΔA÷W×F =12.515 U/g 质量。
2、 取0.1169g萌芽的绿豆加入1mL提取液进行冰浴匀浆,取上清后用蒸馏水稀释2倍后按照测定步骤操作,用1mL玻璃比色皿测得ΔA=A测定-A对照=0.634-0.398=0.236,按样本质量计算MS活性得:
MS活性(U/g 质量)=21×ΔA÷W×F =84.790. U/g 质量。
3、 取0.1102g芒果加入1mL提取液进行冰浴匀浆,取上清后按照测定步骤操作,用1mL玻璃比色皿测得ΔA=A测定-A对照=0.507-0.201=0.306,按样本质量计算MS活性得:
MS活性(U/g 质量)=21×ΔA÷W×F =58.312 U/g 质量。
参考文献:
[1] Roucourt B, Minnebo N, Augustijns P, Hertveldt K, Volckaert G, Lavigne R. Biochemical characterization of malate synthase G of P. aeruginosa. BMC Biochem. 2009 Jun 24;10:20.
[2] Miernyk JA, Trelease RN, Choinski JS. Malate synthase activity in cotton and other ungerminated oilseeds: a survey. Plant Physiol. 1979 Jun;63(6):1068-71.
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