甲基柠檬酸合酶活性检测试剂盒 三羧酸

BC5860-50T/24S甲基柠檬酸合酶活性检测试剂盒 三羧酸

参考价: 面议

具体成交价以合同协议为准
2024-04-23 16:10:26
605
属性:
CAS:详询;纯度:详询;分子量:详询;分子式:详询;供货周期:现货;规格:50T/24S;货号:BC5860;应用领域:环保,化工,生物产业,农业,综合;主要用途:甲基柠檬酸合酶活性检测;
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产品属性
CAS
详询
纯度
详询
分子量
详询
分子式
详询
供货周期
现货
规格
50T/24S
货号
BC5860
应用领域
环保,化工,生物产业,农业,综合
主要用途
甲基柠檬酸合酶活性检测
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北京索莱宝科技有限公司

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产品简介

有效期
6个月
储存条件
-20℃
中文名称
甲基柠檬酸合酶活性检测试剂盒 三羧酸
单位

英文名称
Methylcitrate Synthase(MCS)Activity Assay Kit
检测方法
可见分光光度法
规格
50T/24S

详细介绍

甲基柠檬酸合酶(MCS)活性检测试剂盒说明书

可见分光光度法

货号:BC5860

规格:50T/24S

产品组成:使用前请认真核对试剂体积与瓶内体积是否一致,有疑问请及时联系索莱宝工作人员。

试剂名称

规格

保存条件

提取液

液体30mL×1

-20℃保存

试剂一

液体0.3mL×1

-20℃保存

试剂二

液体60mL×1

2-8℃保存

试剂三

液体2.5mL×1

2-8℃保存

试剂四

粉剂×1

-20℃保存

试剂五

粉剂×1

-20℃保存

溶液的配制:

1、 试剂四:临用前加入1.5mL蒸馏水充分溶解,未用完的试剂-20℃分装保存4周,避免反复冻融。

2、 试剂五:试剂放于棕色瓶内玻璃瓶中,临用前加入3mL蒸馏水充分溶解,未用完的试剂-20℃分装保存4周,避免反复冻融。

产品说明:

甲基柠檬酸合酶(metheyl-citrate synthaseMCS)广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞的线粒体基质中,与柠檬酸合酶(CS)共同参与三羧酸循环的调节。

MCS 催化丙酰CoA和草酰乙酸产生甲基柠檬酰辅*A,进一步水解产生甲基柠檬酸;该反应促使无色的DTNB转变成黄色的TNB,在412nm处有特征吸收峰,据此可以计算MCS活性。


注意:实验之前建议选择2-3个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。

需自备的仪器和用品:

可见分光光度计、1mL玻璃比色皿、天平、低温离心机、水浴锅、研钵/匀浆器/细胞超声破碎仪、冰和蒸馏水。

操作步骤:

一、样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献

1. 组织:按照组织质量(g):提取液体积(mL)为15~10的比例(建议称取约0.1g组织,加入1mL提取液)和10μL试剂一,进行冰浴匀浆。12000g4℃离心10min,取上清置于冰上待测。

2. 细菌/细胞:按照细菌/细胞数量(106个):提取液体积(mL)为5~101的比例(建议5百万细菌/细胞加入1mL提取液和10μL试剂一),冰浴超声波破碎(功率200W,超声3秒,间隔7秒,总时间5min);然后12000 g4℃离心10min,取上清置于冰上待测。

 

二、测定步骤

1、 可见分光光度计预热30min以上,调节波长至412nm,蒸馏水调零。

2、 试剂二置于37℃水浴中预热15min

3、 操作表:在1mL玻璃比色皿或1.5mL EP管中分别加入(适用于测定动物组织样本

试剂名称(μL

对照管

测定管

试剂二

930

800

试剂三

35

35

试剂四

-

40

样本

35

35

试剂五

-

90

1mL玻璃比色皿或1.5mL EP管中分别加入上述试剂,充分混匀后记录412nm10s时的初始吸光度A1对照、A1测定,之后迅速将比色皿连同反应液一起置于37℃水浴中准确反应5min,迅速取出比色皿并擦干,412nm下记录5min10s时的吸光度A2对照、A2测定,计算ΔA=A2测定-A1测定)-A2对照-A1对照)。

4、 操作表:在1mL玻璃比色皿或1.5mL EP管中分别加入(适用于测定微生物和植物组织样本

试剂名称(μL

对照管

测定管

试剂二

765

635

试剂三

35

35

试剂四

-

40

样本

200

200

试剂五

-

90

1mL玻璃比色皿或1.5mL EP管中分别加入上述试剂,充分混匀后记录412nm10s时的初始吸光度A1对照、A1测定,之后迅速将比色皿连同反应液一起置于37℃水浴中准确反应30min,迅速取出比色皿并擦干,412nm下记录30min10s时的吸光度A2对照、A2测定,计算ΔA=A2测定-A1测定)-A2对照-A1对照)。

注:在1.5mL EP管中进行反应时,可参考以下步骤:先将比色皿置于分光光度计中,然后将反应液混匀后迅速加入1mL玻璃比色皿中,记录412nm10s时的初始吸光度A1对照、A1测定,之后迅速将反应液吸取到1.5mL EP管中,置于37℃水浴中准确反应30min,迅速取出EP管并擦干,412nm下记录30min10s时的吸光度A2对照、A2测定。

三、甲基柠檬酸合酶(MCS)计算公式

1. 动物组织样本:

1)按样本蛋白浓度计算:

酶活定义:每mg组织蛋白在反应体系中每分钟催化产生1nmol TNB定义为一个酶活力单位。

MCS活性(U/mg prot=ΔA÷ε×d×V÷Cpr×V样)÷T=420.17×ΔA÷Cpr

2)按样本质量计算:

酶活定义:每g组织在反应体系中每分钟产生1nmol TNB定义为一个酶活力单位。

MCS活性(U/g 质量)=ΔA÷ε×d×V÷W÷V提取×V样)÷T=424.37×ΔA÷W

εTNB摩尔消光系数,13.6×10-3mL/(nmol·cm)d:比色皿光径,1cmV反:反应体系体积,1mLV样:反应体系中加入的样本体积,0.035mLV提取:加入提取液及试剂一的体积,1.01mLT:反应时间,5minCpr:样本蛋白浓度,mg/mLW:样本质量,g

 

 

 

2. 微生物和植物组织样本:

1)按样本蛋白浓度计算:

酶活定义:每mg组织蛋白在反应体系中每分钟催化产生1nmol TNB定义为一个酶活力单位。

MCS活性(U/mg prot=ΔA÷ε×d×V÷Cpr×V样)÷T=12.25×ΔA÷Cpr

2)按样本质量计算:

酶活定义:每g组织在反应体系中每分钟产生1nmol TNB定义为一个酶活力单位。

MCS活性(U/g 质量)=ΔA÷ε×d×V÷W÷V提取×V样)÷T=12.38×ΔA÷W

3)按细菌/细胞计算:

酶活定义:每106个细菌/细胞在反应体系中每分钟催化产生1nmol TNB定义为一个酶活力单位。

MCS活性(U/106 cell=ΔA÷ε×d×V÷N÷V提取×V样)÷T = 12.38×ΔA÷N

εTNB摩尔消光系数,13.6×10-3mL/(nmol·cm)d:比色皿光径,1cmV反:反应体系体积,1mLV样:反应体系中加入的样本体积,0.2mLV提取:加入提取液及试剂一的体积,1.01mLT:反应时间,30minCpr:样本蛋白浓度,mg/mLW:样本质量,gN:细菌或细胞总数,以106计。

注意事项:

1. 测定过程中样本和所有试剂在冰上放置,以免变性和失活。

2. 最好两个人同时做此实验,一个人比色,一个人计时,以保证实验结果的准确性。

3. 由于提取液含有蛋白成分(约1mg/mL),故测定蛋白浓度时需要同时测定提取液的蛋白浓度。

4. 当样本ΔA0.01时,可适当延长酶促反应时间或增大样本量后测定,注意同步修改计算公式。

5. 当样本ΔA>1A>1.5时,可将样本用提取液适当稀释后测定,注意同步修改计算公式。

实验实例:

1、 0.0918g小鼠心脏加入1mL提取液和10μL试剂一进行冰浴匀浆,取上清用后按照测定步骤操作,用1mL玻璃比色皿测得ΔA=A2测定-A1测定)-A2对照-A1对照)=0.930-0.339-0.333-0.294=0.552按样本质量计算MCS活性得:

MCS活性(U/g 质量)= 424.37×ΔA÷W =2551.76U/g 质量。

2、 0.1186g霉菌加入1mL提取液和10μL试剂一进行冰浴匀浆,取上清后按照测定步骤操作,用1mL玻璃比色皿测得ΔA=A2测定-A1测定)-A2对照-A1对照)=0.536-0.396-0.357-0.376=0.159按样本质量计算MCS活性得:

MCS活性(U/g 质量)=12.38×ΔA÷W =16.60 U/g 质量。

3、 0.1013g竹叶加入1mL提取液和10μL试剂一进行冰浴匀浆,取上清后按照测定步骤操作,用1mL玻璃比色皿测得ΔA=A2测定-A1测定)-A2对照-A1对照)=0.477-0.413-0.411-0.403=0.056按样本质量计算MCS活性得:

MCS活性(U/g 质量)=12.38×ΔA÷W =6.844 U/g 质量。

参考文献:

[1] Maerker, C, et al. "Methylcitrate synthase from Aspergillus fumigatus. Propionyl-CoA affects polyketide synthesis, growth and morphology of conidia. " Febs Journal 272.14(2010):3615-3630.

 

[2] Watson, D., Lindel, D.L. & Fall, R. Pseudomonas aeruginosa contains an inducible methylcitrate synthase. Current Microbiology 8, 17–21 (1983).

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