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D-乳酸(D-LA)含量检测试剂盒(WST显色法)说明书
可见分光光度法
注意:本产品试剂有所变动,请注意并严格按照该说明书操作。
货号:BC5350
规格:50T/24S
产品组成:使用前请认真核对试剂体积与瓶内体积是否一致,有疑问请及时联系索莱宝工作人员。
试剂名称 | 规格 | 保存条件 |
提取液一 | 液体30 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
提取液二 | 液体5 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
试剂一 | 液体30 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
试剂二 | 粉剂×2支 | -20℃保存 |
试剂三 | 粉剂×1瓶 | -20℃保存 |
试剂四 | 液体12 mL×1瓶 | |
标准品 | 液体1mL×1支 | -20℃保存 |
溶液的配制:
1、 试剂二:临用前取一支加入160μL蒸馏水溶解。2-8℃可以保存4周(该试剂为冻干试剂,可能存在肉眼观察试剂量相差较大甚至量很少的现象,此现象不影响使用,实际质量相同);
2、 试剂二工作液的配制:临用前按试剂二(V):蒸馏水(V)=10μL:90μL(1T)的比例配制,现用现配,用多少配多少;
3、 试剂三:临用前加入15 mL 蒸馏水混匀,可分装后-20℃保存,避免反复冻融,-20℃保存4周;
4、 标准品:1000μmol/mL D-乳酸标准液。临用前取20μL 1000μmol/mL D-乳酸标准液和1980μL蒸馏水混合配成10μmol/mL 标准溶液;再吸取20μL 10μmol/mL 标准溶液和620μL蒸馏水混合配成0.3125μmol/mL 标准溶液备用。
产品说明:
乳酸是生物体代谢过程中重要的中间产物,与糖代谢、脂类代谢、蛋白质代谢及细胞内能量代谢密切相关,乳酸含量是评估糖元代谢的和有氧代谢的重要指标。D-乳酸在D-乳酸脱氢酶的作用下生成丙酮酸,同时使NAD+还原生成NADH和H+,在1-mPMS作用下,WST-1可与NADH反应,产生水溶性formazan,其在450nm处有最大吸收峰,据此可计算D-乳酸含量。
注意:实验之前建议选择2-3个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。
需自备的仪器和用品:
可见分光光度计、分析天平、研钵/匀浆器/超声波细胞破碎仪、离心机、1mL玻璃比色皿、水浴锅/恒温培养
箱、蒸馏水和冰。
操作步骤:
一、样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献)
组织:按照质量(g):提取液一体积(mL)为1:5~10的比例(建议称取约0.1g,加入1mL提取液一)加入提取液一,冰浴匀浆后于4℃,12000g离心10min,取0.8mL上清液,再缓慢加入0.15mL提取液二,缓慢吹打混匀至无气泡产生,4℃ 12000g离心10min后取上清待测。
细胞:按照细胞数量(104个):提取液一体积(mL)为500~1000:1的比例(建议500万细胞加入1mL提取液一),冰浴超声波破碎细胞(功率300w,超声3秒,间隔7秒,总时间3min);于4℃,12000g离心10min,取0.8mL上清液,再缓慢加入0.15mL提取液二,缓慢吹打混匀至无气泡产生,4℃ 12000g离心10min后取上清待测。
血清(浆)等液体:取100μL液体加入1mL提取液一,4℃ 12000g离心10min,取0.8mL上清液,再缓慢加入0.15mL提取液二,缓慢吹打混匀至无气泡产生,12000g离心10min后取上清待测。
注:提取液二需缓慢加入,加入后会产生大量气泡,建议使用2mL EP管进行操作。
二、测定步骤
1、分光光度计预热30min以上,波长调至450nm,蒸馏水调零。
2、加样表:(按顺序将下列试剂加在EP管中)
测定管 | 对照管 | 标准管 | 空白管 | |
样本 | 100 | 100 | - | - |
标准溶液 | - | - | 100 | - |
蒸馏水 | - | 100 | - | 100 |
试剂一 | 450 | 450 | 450 | 450 |
试剂二工作液 | 100 | - | 100 | 100 |
试剂三 | 200 | 200 | 200 | 200 |
试剂四 | 150 | 150 | 150 | 150 |
充分混匀,于37℃水浴锅/恒温培养箱避光准确反应30min,取全部反应液到1mL比色皿中,于450nm处测定吸光值,分别记为A测定管,A对照管,A标准管,A空白管,计算ΔA测定=A测定管-A对照管;ΔA标准=A标准管-A空白管。每个测定管需设置一个对照管,空白管和标准管只需测定1-2次。 |
三、D-乳酸含量的计算
1. 按照蛋白含量计算
D-LA含量(μmol/mg prot)= ΔA测定÷(ΔA标准÷C标准)×V样本÷(V样本×Cpr)
= 0.3125×ΔA测定÷ΔA标准÷Cpr
2. 按照样本质量计算
D-LA含量(μmol/g 质量)
= ΔA测定÷(ΔA标准÷C标准)×(V上清+V提取液二)÷(W×V上清÷V提取液一)
=0.3711×ΔA测定÷ΔA标准÷W
3. 按照细胞数量计算
D-LA含量(μmol/106 cell)
= ΔA测定÷(ΔA标准÷C标准)×(V上清+V提取液二)÷(N×V上清÷V提取液一)
= 0.3711×ΔA测定÷ΔA标准÷N
4. 按照液体体积计算
D-LA含量(μmol/mL)
=ΔA测定÷(ΔA标准÷C标准)×(V上清+V提取液二)÷ [V液体×V上清÷(V提取液一+V液体)]
=4.082×ΔA测定÷ΔA标准
C标准:标准溶液浓度,0.3125μmol/mL;V样本:加入的样本体积,0.1mL;W:样本质量,g;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL,蛋白浓度需自行测定;V上清:提取时上清液体积,0.8mL;V提取液二:加入的提取液二体积,0.15mL;V提取液一:加入的提取液一体积,1mL;N:细胞数量,以106计;V液体:液体样本体积,0.1mL。
注意事项:
1. 提取液一中含有蛋白质沉淀剂,因此上清液不能用于蛋白浓度测定。如需测定蛋白含量,需另取组织。
2. ΔA测定的测定范围在0.01-1.2之间。如果测定吸光值超过线性范围吸光值,可以用蒸馏水稀释样本后再次测定,如果测定吸光值小于线性范围吸光值,需要增加样本量后再次测定,注意同步计算公式。
实验实例:
1、 取0.104g兔肌肉加入1mL提取液一,冰浴匀浆后离心,取0.8mL上清后加0.15mL提取液二,离心取上清后按照测定步骤操作,使用比色皿测得计算ΔA测定=A测定管-A对照管=0.637-0.308=0.329,ΔA标准=A标准管-A空白管=0.636-0.124=0.512,按照样本质量计算含量得:
D-LA含量(μmol/g 质量)= 0.3711×ΔA 测定÷ΔA标准÷W =2.2929 μmol/g质量。
2、 取100μL牛血清加入1mL提取液一,离心,取0.8mL上清后加0.15mL提取液二,离心取上清,之后按照测定步骤操作,使用比色皿测得计算ΔA测定管=A测定管-A对照管=0.356-0.302=0.054,ΔA标准=A标准管-A空白管=0.636-0.124=0.512,按照液体体积计算含量得:
D-LA含量(μmol/mL)=4.082×ΔA 测定÷ΔA标准=0.4305 μmol/mL。
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