D-乳酸(D-LA)含量检测试剂盒 糖酵解

BC5350-50T/24SD-乳酸(D-LA)含量检测试剂盒 糖酵解

参考价: 面议

具体成交价以合同协议为准
2024-04-19 15:20:36
1039
属性:
CAS:详询;纯度:详询;分子量:详询;分子式:详询;供货周期:现货;规格:50T/24S;货号:BC5350;应用领域:环保,化工,生物产业,农业,综合;主要用途:D-乳酸(D-LA)含量检测;
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产品属性
CAS
详询
纯度
详询
分子量
详询
分子式
详询
供货周期
现货
规格
50T/24S
货号
BC5350
应用领域
环保,化工,生物产业,农业,综合
主要用途
D-乳酸(D-LA)含量检测
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北京索莱宝科技有限公司

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产品简介

中文名称
D-乳酸(D-LA)含量检测试剂盒 糖酵解
有效期
6个月
储存条件
-20℃
单位

英文名称
D-Lactic acid(D-LA) Content Assay Kit
检测方法
可见分光光度法 Spectrophotometer
规格
50T/24S

详细介绍

D-乳酸(D-LA)含量检测试剂盒(WST显色法)说明书

可见分光光度法

注意:本产品试剂有所变动,请注意并严格按照该说明书操作。

货号:BC5350

规格:50T/24S

产品组成:使用前请认真核对试剂体积与瓶内体积是否一致,有疑问请及时联系索莱宝工作人员。

试剂名称

规格

保存条件

提取液一

液体30 mL×1

2-8℃保存

提取液二

液体5 mL×1

2-8℃保存

试剂一

液体30 mL×1

2-8℃保存

试剂二

粉剂×2

-20℃保存

试剂三

粉剂×1

-20℃保存

试剂四

液体12 mL×1

2-8℃保存

标准品

液体1mL×1

-20℃保存

溶液的配制:  

1、 试剂二:临用前取一支加入160μL蒸馏水溶解2-8℃可以保存4(该试剂为冻干试剂,可能存在肉眼观察试剂量相差较大甚至量很少的现象,此现象不影响使用,实际质量相同)

2、 试剂二工作液的配制:临用前按试剂二(V):蒸馏水(V=10μL90μL1T)的比例配制,现用现配,用多少配多少

3、 试剂三:临用前加入15 mL 蒸馏水混匀,可分装后-20℃保存,避免反复冻融,-20℃保存4周;

4、 标准品:1000μmol/mL D-乳酸标准液。临用前取20μL 1000μmol/mL D-乳酸标准液和1980μL蒸馏水混合配成10μmol/mL 标准溶液;再吸取20μL 10μmol/mL 标准溶液和620μL蒸馏水混合配成0.3125μmol/mL 标准溶液备用。

产品说明:

乳酸是生物体代谢过程中重要的中间产物,与糖代谢、脂类代谢、蛋白质代谢及细胞内能量代谢密切相关,乳酸含量是评估糖元代谢的和有氧代谢的重要指标。D-乳酸在D-乳酸脱氢酶的作用下生成丙酮酸,同时使NAD+还原生成NADHH+,在1-mPMS作用下,WST-1可与NADH反应,产生水溶性formazan,其在450nm处有最大吸收峰,据此可计算D-乳酸含量。


注意:实验之前建议选择2-3个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。

需自备的仪器和用品:

可见分光光度计、分析天平、研钵/匀浆器/超声波细胞破碎仪、离心机、1mL玻璃比色皿、水浴锅/恒温培养

 

箱、蒸馏水和冰

操作步骤:

一、样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献)

组织:按照质量(g):提取液一体积(mL)15~10的比例(建议称取约0.1g,加入1mL提取液一)加入提取液一,冰浴匀浆后于4℃12000g离心10min,取0.8mL上清液,再缓慢加入0.15mL提取液二,缓慢吹打混匀至无气泡产生,4℃ 12000g离心10min后取上清待测。

细胞:按照细胞数量(104个):提取液一体积(mL)为500~10001的比例(建议500万细胞加入1mL提取液一),冰浴超声波破碎细胞(功率300w,超声3秒,间隔7秒,总时间3min);于4℃12000g离心10min,取0.8mL上清液,再缓慢加入0.15mL提取液二,缓慢吹打混匀至无气泡产生,4℃ 12000g离心10min后取上清待测。

血清(浆)等液体:取100μL液体加入1mL提取液一,4℃ 12000g离心10min,取0.8mL上清液,再缓慢加入0.15mL提取液二,缓慢吹打混匀至无气泡产生,12000g离心10min后取上清待测。

注:提取液二需缓慢加入,加入后会产生大量气泡,建议使用2mL EP管进行操作。

二、测定步骤

1、分光光度计预热30min以上,波长调至450nm,蒸馏水调零。

2、加样表:(按顺序将下列试剂加在EP管中)

试剂名称(μL

测定管

对照管

标准管

空白管

样本

100

100

-

-

标准溶液

-

-

100

-

蒸馏水

-

100

-

100

试剂一

450

450

450

450

试剂二工作液

100

-

100

100

试剂三

200

200

200

200

试剂四

150

150

150

150

充分混匀,于37℃水浴锅/恒温培养箱避光准确反应30min,取全部反应液到1mL比色皿中,于450nm处测定吸光值,分别记为A测定管,A对照管,A标准管,A空白管,计算ΔA测定=A测定管-A对照管;ΔA标准=A标准管-A空白管。每个测定管需设置一个对照管,空白管和标准管只需测定1-2次。

三、D-乳酸含量的计算

1. 按照蛋白含量计算

D-LA含量(μmol/mg prot= ΔA测定÷ΔA标准÷C标准)×V样本÷V样本×Cpr
= 0.3125×ΔA测定÷ΔA标准÷Cpr

2. 按照样本质量计算

D-LA含量(μmol/g 质量)

= ΔA测定÷ΔA标准÷C标准)×V上清+V提取液二)÷W×V上清÷V提取液一)

=0.3711×ΔA测定÷ΔA标准÷W

3. 按照细胞数量计算

D-LA含量(μmol/106 cell

= ΔA测定÷ΔA标准÷C标准)×V上清+V提取液二)÷N×V上清÷V提取液一)

 

 

 

= 0.3711×ΔA测定÷ΔA标准÷N

4. 按照液体体积计算

D-LA含量(μmol/mL

=ΔA测定÷ΔA标准÷C标准)×V上清+V提取液二)÷ [V液体×V上清÷V提取液一+V液体)]

=4.082×ΔA测定÷ΔA标准

C标准:标准溶液浓度,0.3125μmol/mLV样本:加入的样本体积,0.1mLW:样本质量,gCpr:样本蛋白质浓度,mg/mL,蛋白浓度需自行测定V上清:提取时上清液体积,0.8mLV提取液二:加入的提取液二体积,0.15mLV提取液一:加入的提取液一体积,1mLN:细胞数量,以106计;V液体:液体样本体积,0.1mL

注意事项:

1. 提取液一中含有蛋白质沉淀剂,因此上清液不能用于蛋白浓度测定。如需测定蛋白含量,需另取组织。

2. ΔA测定的测定范围在0.01-1.2之间。如果测定吸光值超过线性范围吸光值,可以用蒸馏水稀释样本后再次测定,如果测定吸光值小于线性范围吸光值,需要增加样本量后再次测定,注意同步计算公式。

实验实例:

1、 0.104g兔肌肉加入1mL提取液一,冰浴匀浆后离心,取0.8mL上清后加0.15mL提取液二,离心取上清后按照测定步骤操作,使用比色皿测得计算ΔA测定=A测定管-A对照管=0.637-0.308=0.329ΔA标准=A标准管-A空白管=0.636-0.124=0.512,按照样本质量计算含量得:

D-LA含量(μmol/g 质量)= 0.3711×ΔA 测定÷ΔA标准÷W =2.2929 μmol/g质量。

2、 100μL牛血清加入1mL提取液一,离心,0.8mL上清后加0.15mL提取液二,离心取上清,之后按照测定步骤操作,使用比色皿测得计算ΔA测定管=A测定管-A对照管=0.356-0.302=0.054ΔA标准=A标准管-A空白管=0.636-0.124=0.512,按照液体体积计算含量得:

D-LA含量(μmol/mL=4.082×ΔA 测定÷ΔA标准=0.4305 μmol/mL

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