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D-乳酸脱氢酶(D-LDH)活性检测试剂盒说明书
可见分光光度法
货号:BC5280
规格:50T/24S
产品组成:使用前请认真核对试剂体积与瓶内体积是否一致,有疑问请及时联系索莱宝工作人员。
试剂名称 | 规格 | 保存条件 |
提取液 | 液体30 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
试剂一 | 液体20 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
试剂二 | 粉剂×1支 | -20℃保存 |
试剂三 | 液体20 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
试剂四 | 液体60 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
标准品 | 液体1 mL×1支 | 2-8℃保存 |
溶液的配制:
1、 试剂二:临用前加入1.6 mL蒸馏水,充分溶解。用不完的试剂分装保存,-20℃可保存4周,避免反复冻融;
2、 标准品:20 μmol/mL 丙酮酸钠溶液。
产品说明:
乳酸脱氢酶(Lactate dehydrogenase,LDH)广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞中,是糖酵解途径的末端酶,催化丙酮酸与乳酸之间的可逆反应,伴随着NAD+/NADH之间互变。根据其催化底物-乳酸构型的不同,可分为D-乳酸脱氢酶(D-LDH,EC 1.1.1.28)与L-乳酸脱氢酶(L-LDH,EC 1.1.1.27)。
D-LDH催化NAD+氧化D-乳酸生成丙酮酸,丙酮酸进一步与2,4-二硝*苯肼作用生成丙酮酸二硝基苯腙,在碱性溶液中显棕红色,颜色深浅与丙酮酸浓度成正比。
注意:实验之前建议选择2-3个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。
需自备的仪器和用品:
可见分光光度计、水浴锅/恒温培养箱、台式离心机、可调式移液器、1mL玻璃比色皿、研钵/匀浆器/细胞超声破碎仪、冰和蒸馏水。
操作步骤:
一、样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献)
1. 细菌或培养细胞:先收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;按照细菌或细胞数量(104个):提取液体积(mL)为500~1000:1的比例(建议500万细菌或细胞加入1mL提取液),超声波破碎细菌或细胞(冰浴,功率200W,超声3s,间隔10s,重复30次);8000g 4℃离心10min,取上清,置冰上待测。
2. 组织:按照组织质量(g):提取液体积(mL)为1:5~10的比例(建议称取约0.1g组织,加入1mL提取液),进行冰浴匀浆。8000g 4℃离心10min,取上清,置冰上待测。
3. 血清(浆)等其他液体:直接检测。若有沉淀请离心后取上清待测。
二、测定步骤
1、 可见分光光度计预热30min以上,调节波长至450nm,蒸馏水调零。
2、 标准溶液的稀释:将20μmol/mL丙酮酸钠标准溶液用蒸馏水进行稀释得到2、1.5、1、0.5、0.25、0.125、0.0625、0.03125μmol/mL标准溶液备用。
3、 标准溶液稀释可参考下表:
序号 | 稀释前浓度(μmol/mL) | 标准溶液体积(µL) | 蒸馏水体积(µL) | 稀释后浓度(μmol/mL) |
1 | 20 | 100 | 900 | 2 |
2 | 2 | 150 | 50 | 1.5 |
3 | 2 | 100 | 100 | 1 |
4 | 1 | 100 | 100 | 0.5 |
5 | 0.5 | 100 | 100 | 0.25 |
6 | 0.25 | 100 | 100 | 0.125 |
7 | 0.125 | 100 | 100 | 0.0625 |
8 | 0.0625 | 100 | 100 | 0.03125 |
备注:实验中每个标准管需50µL标准溶液。
4、 在1.5mL EP管按下表步骤加样
试剂名称(μL) | 测定管 | 对照管 | 标准管 | 空白管 |
待测样本 | 50 | 50 | - | - |
标准液 | - | - | 50 | - |
试剂一 | 250 | 250 | 250 | 250 |
试剂二 | 50 | - | - | - |
蒸馏水 | - | 50 | 50 | 100 |
试剂三 | 250 | 250 | 250 | 250 |
充分混匀,37℃水浴15min | ||||
试剂四 | 750 | 750 | 750 | 750 |
充分混匀,室温静置3min,取1mL转移至1mL玻璃比色皿中,450nm下测定吸光度,计算ΔA测定=A测定-A对照,ΔA标准=A标准-A空白。空白管和标准曲线只需做1-2次,每个测定管需要设一个对照管。
三、D-LDH活性计算
1. 标准曲线的绘制
根据标准管的浓度(x,μmol/mL)和吸光度ΔA标准(y,ΔA标准),建立标准曲线。根据标准曲线,将ΔA测定(y,ΔA测定)带入公式计算样本浓度(x,μmol/mL)。
2. D-LDH活性计算
(1) 按样本蛋白浓度计算
单位的定义:每mg组织蛋白每分钟催化产生1nmol丙酮酸定义为一个酶活力单位。
D-LDH活性(U/mg prot)= x×V样÷(Cpr×V样)÷T×103×F=66.67×x÷Cpr×F
(2) 按样本质量计算
单位的定义:每g组织每分钟催化产生1nmol丙酮酸定义为一个酶活力单位。
D-LDH活性(U/g 质量)= x×V样÷(W÷V样总×V样)÷T×103×F=66.67×x÷W×F
(3) 按细菌/细胞数量计算
单位的定义:每1万个细菌或细胞每分钟催化产生1nmol丙酮酸定义为一个酶活力单位。
D-LDH活性(U/104 cell)= x×V样÷(N÷V样总×V样)÷T×103×F=66.67×x×F÷N
(4) 按血清(浆)等液体体积计算
单位的定义:每mL血清(浆)等液体每分钟催化产生1nmol丙酮酸定义为一个酶活力单位。
D-LDH活性(U/mL)=x×V样÷V样÷T×103×F=66.67×x×F
V样:反应体系中加入的样本体积,0.05mL;V样总:加入的提取液体积,1mL;T:反应时间,15min;Cpr:蛋白质浓度,mg/mL;W:样本质量,g;N:细胞或细菌数量,以万计;103:单位换算系数,1μmol/mL=103nmol/mL;F:样本稀释倍数。
注意事项:
1. 如果测定管吸光值接近空白或ΔA测定过低,可适当加大样本量后重新测定;如果测定管吸光值超过1.5或ΔA测定超过0.4,建议将样本用提取液适当稀释后进行测定。注意同步修改计算公式。
实验实例:
1、 取0.109g兔肾加入1mL提取液进行冰浴匀浆,按照测定步骤操作,用1mL玻璃比色皿测得计算ΔA测定=A测定-A对照=0.437-0.326=0.111,带入标准曲线y=0.6126x+0.0162,计算x=0.155,按样本质量计算酶活得:
D-LDH活性(U/g 质量)=66.67×x÷W×F =94.653 U/g 质量
2、 取0.1018g拟南芥加入1mL提取液进行冰浴匀浆,按照测定步骤操作,用1mL玻璃比色皿测得计算ΔA测定=A测定-A对照=0.256-0.207=0.049,带入标准曲线y=0.6126x+0.0162,计算x=0.054,按样本质量计算酶活得:
D-LDH活性(U/g 质量)=66.67×x÷W×F =35.065 U/g 质量
3、 取500万细胞样本加入1mL提取液进行冰浴匀浆,按照测定步骤操作,用1mL玻璃比色皿测得计算ΔA测定=A测定-A对照=0.249-0.195=0.054,带入标准曲线y=0.6126x+0.0162,计算x=0.062,按细菌/细胞数目计算酶活得:
D-LDH活性(U/104 cell)=0.133×x×F =0.008U/104 cell
4、 取50μL胎牛血清,按照测定步骤操作,用1mL玻璃比色皿测得计算ΔA测定=A测定-A对照=0.360-0.217= 0.143,带入标准曲线y=0.6126x+0.0162,计算x=0.207,按液体体积计算酶活得:
D-LDH活性(U/mL)=66.67×x×F =13.800 U/mL
参考文献:
[1] Huang P H, Fu L C, Huang C S, et al. The uptake of oligogalacturonide and its effect on growth inhibition, lactate dehydrogenase activity and galactin-3 release of human cancer cells[J]. Food chemistry, 2012, 132(4): 1987-1995.
[2] Huang Y N, Xu G T, You C P. The research progress of the lactate dehydrogenases in lactic acid bacteria[J]. Science and Technology of Food Industry, 2016, (08): 369-373.
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