L -乳酸(L -LA)含量检测试剂盒 糖酵解

BC5340-50T/24SL -乳酸(L -LA)含量检测试剂盒 糖酵解

参考价: 面议

具体成交价以合同协议为准
2024-04-19 15:06:25
721
属性:
CAS:详询;纯度:详询;分子量:详询;分子式:详询;供货周期:现货;规格:50T/24S;货号:BC5340;应用领域:环保,化工,生物产业,农业,综合;主要用途:L -乳酸(L -LA)含量检测;
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产品属性
CAS
详询
纯度
详询
分子量
详询
分子式
详询
供货周期
现货
规格
50T/24S
货号
BC5340
应用领域
环保,化工,生物产业,农业,综合
主要用途
L -乳酸(L -LA)含量检测
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北京索莱宝科技有限公司

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产品简介

L -乳酸(L -LA)含量检测试剂盒 糖酵解
有效期
6个月
储存条件
-20℃
单位

英文名称
Lactic acid(LA) content Assay Kit
检测方法
可见分光光度法 Spectrophotometer
规格
50T/24S

详细介绍

L-乳酸(L-LA)含量检测试剂盒(WST显色法)说明书

可见分光光度法

注意:本产品试剂有所变动,请注意并严格按照该说明书操作。

货号:BC5340

规格:50T/24S

产品组成:使用前请认真核对试剂体积与瓶内体积是否一致,有疑问请及时联系索莱宝工作人员。

试剂名称

规格

保存条件

提取液一

液体30 mL×1

2-8℃保存

提取液二

液体5 mL×1

2-8℃保存

试剂一

液体20 mL×1

2-8℃保存

试剂二

液体60 μL×1

2-8℃保存

试剂三

粉剂×1

-20℃保存

试剂四

液体12 mL×1

2-8℃保存

标准品

粉剂×1

2-8℃保存

溶液的配制:

1、 试剂二:临用前按试剂二(V):蒸馏水(V=10μL450μL9T)的比例配制试剂二溶液,现用现配

2、 试剂三:临用前加入8 mL 蒸馏水混匀,可分装后-20℃保存4周,避免反复冻融;

3、 标准品:临用前加入1.04 mL蒸馏水配成100 μmol/mL 的标准溶液,2-8可保存12

产品说明:

乳酸是生物体代谢过程中重要的中间产物,与糖代谢、脂类代谢、蛋白质代谢及细胞内能量代谢密切相关,乳酸含量是评估糖元代谢的和有氧代谢的重要指标。乳酸在乳酸脱氢酶的作用下生成丙酮酸,同时使NAD+还原生成NADHH+,在1-mPMS作用下,WST-1可与NADH反应,产生水溶性formazan,其在450nm处有最大吸收峰,据此可计算乳酸含量。


注意:实验之前建议选择2-3个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。

需自备的仪器和用品:

分析天平、研钵/匀浆器/超声波细胞破碎仪、离心机、可见分光光度计、1mL玻璃比色皿、水浴锅/恒温培养箱、蒸馏水。

操作步骤:

一、 样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献)

 

1. 组织:按照质量(g):提取液一体积(mL)15~10的比例(建议称取约0.1g,加入1mL提取液一)加入提取液一,冰浴匀浆后于4℃12000g离心10min,取0.8mL上清液,再缓慢加入0.15mL提取液二,缓慢吹打混匀至无气泡产生,4℃ 12000g离心10min后取上清待测。

2. 细胞/细菌:按照细胞/细菌数量(104个):提取液一体积(mL)为500~10001的比例(建议500万细胞/细菌加入1mL提取液一),冰浴超声波破碎细胞/细菌(功率300w,超声3秒,间隔7秒,总时间3min);于4℃12000g离心10min,取0.8mL上清液,再缓慢加入0.15mL提取液二,缓慢吹打混匀至无气泡产生,4℃ 12000g离心10min后取上清待测。

3. 血清(浆)等液体:取100μL液体加入1mL提取液一,4℃ 12000g离心10min,取0.8mL上清液,再缓慢加入0.15mL提取液二,缓慢吹打混匀至无气泡产生,4℃ 12000g离心10min后取上清待测。

注:提取液二需缓慢加入,加入后会产生大量气泡,建议使用2mL EP管进行操作。

二、测定步骤

1、 分光光度计预热30min以上,波长调至450nm,蒸馏水调零。

2、 标准液的稀释:将100μmol/mL的标准溶液用蒸馏水稀释为0.6250.31250.156250.0780.0390.0200.01μmol/mL的标准溶液备用。

3、标准品稀释表:

序号

稀释前浓度(μmol/mL

标准液体积(µL

蒸馏水体积(µL

稀释后浓度(μmol/mL

1

100

50

950

5

2

5

100

700

0.625

3

0.625

200

200

0.3125

4

0.3125

200

200

0.15625

5

0.15625

200

200

0.078

6

0.078

200

200

0.039

7

0.039

200

200

0.020

8

0.020

200

200

0.010

实验中每个标准管需50µL标准溶液

3、加样表:(按顺序将下列试剂加在EP管中)

试剂名称

测定管

对照管

标准管

空白管

样本(μL

50

50

-

-

标准品(μL

-

-

50

-

蒸馏水(μL

-

50

-

50

试剂一(μL

200

200

200

200

试剂二(μL

50

-

50

50

试剂三(μL

100

100

100

100

试剂四(μL

150

150

150

150

充分混匀,于37℃水浴锅/恒温培养箱避光准确反应30min

蒸馏水(μL

450

450

450

450

混匀后,取出全部反应液到1mL比色皿中,于450nm处测定吸光值,分别记为A测定管,A对照管,A标准管,A空白管,计算ΔA测定=A测定管-A对照管;ΔA标准=A标准管-A空白管。每个测定管需设置一个对照管,空白管和标准曲线只需测定1-2次。

三、乳酸含量的计算

1、标准曲线的绘制

以各标准溶液浓度为x轴,以其对应的吸光值ΔA标准)y轴,绘制标准曲线,得到标准方程y=kx+b,将

ΔA测定带入公式中得到xμmol/mL)。

2、乳酸含量计算

1)按照蛋白含量计算

L-LA含量(μmol/mg prot=x×V样本÷V样本×Cpr=x÷Cpr

2)按照样本质量计算

L-LA含量(μmol/g 质量)=x×V上清+V提取液二)÷W×V上清÷V提取液一)=1.1875×x÷W

3)按照细胞/细菌数量计算

L-LA含量(μmol/104 cell=x×V上清+V提取液二)÷N×V上清÷V提取液一)=1.1875×x÷N

4)按照液体体积计算

L-LA含量(μmol/mL=x×V上清+V提取液二)÷ [V液体×V上清÷V提取液一+V液体)]=13.0625×x

V样本:加入的样本体积,0.05mLW:样本质量,gCpr:样本蛋白质浓度,mg/mL,蛋白浓度需自行测定V上清:提取时上清液体积,0.8mLV提取液二:加入的提取液二体积,0.15mLV提取液一:加入的提取液一体积,1mLN:细胞/细菌数量,104个;V液体:液体样本体积,0.1mL

注意事项:

1. ΔA测定的测定范围在0.01-1之间。如果测定吸光值超过线性范围吸光值,可以用蒸馏水稀释样本后再次测定,如果测定吸光值小于线性范围吸光值,需要增加样本量后再次测定,注意同步计算公式。

2. 提取液一中含有蛋白质沉淀剂,因此上清液不能用于蛋白浓度测定。如需测定蛋白含量,需另取样本。

实验实例:

1、 0.1466g小鼠肝加入1mL提取液一,冰浴匀浆后离心,取0.8mL上清后加0.15mL提取液二,离心取上清后用蒸馏水稀释两倍,按照测定步骤操作,使用1mL比色皿测得计算ΔA测定=A测定管-A对照管=0.972-0.092= 0.880,根据标准曲线y=1.365x-0.0041R2=0.9999,计算x=0.6477,按样本质量计算含量得:

L-LA含量(μmol/g 质量)= 1.1875×x÷W×稀释倍数(2=10.493 μmol/g质量。

2、 0.1063g红薯根加入1mL提取液一,冰浴匀浆后离心,0.8mL上清后加0.15mL提取液二,离心取上清,之后按照测定步骤操作,使用1mL比色皿测得计算ΔΔA测定=A测定管-A对照管=0.124-0.099=0.025,根据标准曲线y=1.365x-0.0041R2=0.9999,计算x=0.0213,按样本质量计算含量得:

L-LA含量(μmol/g 质量)=1.1875×x÷W=0.2382μmol/g质量。

3、 100μL羊血清加入1mL提取液一,离心,0.8mL上清后加0.15mL提取液二,离心取上清,之后按照测定步骤操作,使用1mL比色皿测得计算ΔA测定=A测定管-A对照管=0.587-0.095=0.492,根据标准曲线y=1.365x-0.0041R2=0.9999,计算x=0.3634,按照液体体积计算含量得:

L-LA含量(μmol/mL=13.0625×x=4.748 μmol/mL

参考文献:

Eolbergrová J, MacMillan V, Siesjö B K. The effect of moderate and marked hypercapnia upon the energy state and upon the cytoplasmic NADH/NAD+ ratio of the rat brain[J]. Journal of neurochemistry, 1972, 19(11): 2497-2505.

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