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L-乳酸(L-LA)含量检测试剂盒(WST显色法)说明书
可见分光光度法
注意:本产品试剂有所变动,请注意并严格按照该说明书操作。
货号:BC5340
规格:50T/24S
产品组成:使用前请认真核对试剂体积与瓶内体积是否一致,有疑问请及时联系索莱宝工作人员。
试剂名称 | 规格 | 保存条件 |
提取液一 | 液体30 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
提取液二 | 液体5 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
试剂一 | 液体20 mL×1瓶 | 2-8℃保存 |
试剂二 | 液体60 μL×1支 | 2-8℃保存 |
试剂三 | 粉剂×1瓶 | -20℃保存 |
试剂四 | 液体12 mL×1瓶 | |
标准品 | 粉剂×1支 | 2-8℃保存 |
溶液的配制:
1、 试剂二:临用前按试剂二(V):蒸馏水(V)=10μL:450μL(9T)的比例配制试剂二溶液,现用现配;
2、 试剂三:临用前加入8 mL 蒸馏水混匀,可分装后-20℃保存4周,避免反复冻融;
3、 标准品:临用前加入1.04 mL蒸馏水配成100 μmol/mL 的标准溶液,2-8℃可保存12周;
产品说明:
乳酸是生物体代谢过程中重要的中间产物,与糖代谢、脂类代谢、蛋白质代谢及细胞内能量代谢密切相关,乳酸含量是评估糖元代谢的和有氧代谢的重要指标。乳酸在乳酸脱氢酶的作用下生成丙酮酸,同时使NAD+还原生成NADH和H+,在1-mPMS作用下,WST-1可与NADH反应,产生水溶性formazan,其在450nm处有最大吸收峰,据此可计算乳酸含量。
注意:实验之前建议选择2-3个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。
需自备的仪器和用品:
分析天平、研钵/匀浆器/超声波细胞破碎仪、离心机、可见分光光度计、1mL玻璃比色皿、水浴锅/恒温培养箱、蒸馏水。
操作步骤:
一、 样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献)
1. 组织:按照质量(g):提取液一体积(mL)为1:5~10的比例(建议称取约0.1g,加入1mL提取液一)加入提取液一,冰浴匀浆后于4℃,12000g离心10min,取0.8mL上清液,再缓慢加入0.15mL提取液二,缓慢吹打混匀至无气泡产生,4℃ 12000g离心10min后取上清待测。
2. 细胞/细菌:按照细胞/细菌数量(104个):提取液一体积(mL)为500~1000:1的比例(建议500万细胞/细菌加入1mL提取液一),冰浴超声波破碎细胞/细菌(功率300w,超声3秒,间隔7秒,总时间3min);于4℃,12000g离心10min,取0.8mL上清液,再缓慢加入0.15mL提取液二,缓慢吹打混匀至无气泡产生,4℃ 12000g离心10min后取上清待测。
3. 血清(浆)等液体:取100μL液体加入1mL提取液一,4℃ 12000g离心10min,取0.8mL上清液,再缓慢加入0.15mL提取液二,缓慢吹打混匀至无气泡产生,4℃ 12000g离心10min后取上清待测。
注:提取液二需缓慢加入,加入后会产生大量气泡,建议使用2mL EP管进行操作。
二、测定步骤
1、 分光光度计预热30min以上,波长调至450nm,蒸馏水调零。
2、 标准液的稀释:将100μmol/mL的标准溶液用蒸馏水稀释为0.625、0.3125、0.15625、0.078、0.039、0.020、0.01μmol/mL的标准溶液备用。
3、标准品稀释表:
序号 | 稀释前浓度(μmol/mL) | 标准液体积(µL) | 蒸馏水体积(µL) | 稀释后浓度(μmol/mL) |
1 | 100 | 50 | 950 | 5 |
2 | 5 | 100 | 700 | 0.625 |
3 | 0.625 | 200 | 200 | 0.3125 |
4 | 0.3125 | 200 | 200 | 0.15625 |
5 | 0.15625 | 200 | 200 | 0.078 |
6 | 0.078 | 200 | 200 | 0.039 |
7 | 0.039 | 200 | 200 | 0.020 |
8 | 0.020 | 200 | 200 | 0.010 |
实验中每个标准管需50µL标准溶液
3、加样表:(按顺序将下列试剂加在EP管中)
测定管 | 对照管 | 标准管 | 空白管 | |
样本(μL) | 50 | 50 | - | - |
标准品(μL) | - | - | 50 | - |
蒸馏水(μL) | - | 50 | - | 50 |
试剂一(μL) | 200 | 200 | 200 | 200 |
试剂二(μL) | 50 | - | 50 | 50 |
试剂三(μL) | 100 | 100 | 100 | 100 |
试剂四(μL) | 150 | 150 | 150 | 150 |
充分混匀,于37℃水浴锅/恒温培养箱避光准确反应30min。 | ||||
蒸馏水(μL) | 450 | 450 | 450 | 450 |
混匀后,取出全部反应液到1mL比色皿中,于450nm处测定吸光值,分别记为A测定管,A对照管,A标准管,A空白管,计算ΔA测定=A测定管-A对照管;ΔA标准=A标准管-A空白管。每个测定管需设置一个对照管,空白管和标准曲线只需测定1-2次。 |
三、乳酸含量的计算
1、标准曲线的绘制
以各标准溶液浓度为x轴,以其对应的吸光值(ΔA标准)为y轴,绘制标准曲线,得到标准方程y=kx+b,将
ΔA测定带入公式中得到x(μmol/mL)。
2、乳酸含量计算
(1)按照蛋白含量计算
L-LA含量(μmol/mg prot)=x×V样本÷(V样本×Cpr)=x÷Cpr
(2)按照样本质量计算
L-LA含量(μmol/g 质量)=x×(V上清+V提取液二)÷(W×V上清÷V提取液一)=1.1875×x÷W
(3)按照细胞/细菌数量计算
L-LA含量(μmol/104 cell)=x×(V上清+V提取液二)÷(N×V上清÷V提取液一)=1.1875×x÷N
(4)按照液体体积计算
L-LA含量(μmol/mL)=x×(V上清+V提取液二)÷ [V液体×V上清÷(V提取液一+V液体)]=13.0625×x
V样本:加入的样本体积,0.05mL;W:样本质量,g;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL,蛋白浓度需自行测定;V上清:提取时上清液体积,0.8mL;V提取液二:加入的提取液二体积,0.15mL;V提取液一:加入的提取液一体积,1mL;N:细胞/细菌数量,104个;V液体:液体样本体积,0.1mL。
注意事项:
1. ΔA测定的测定范围在0.01-1之间。如果测定吸光值超过线性范围吸光值,可以用蒸馏水稀释样本后再次测定,如果测定吸光值小于线性范围吸光值,需要增加样本量后再次测定,注意同步计算公式。
2. 提取液一中含有蛋白质沉淀剂,因此上清液不能用于蛋白浓度测定。如需测定蛋白含量,需另取样本。
实验实例:
1、 取0.1466g小鼠肝加入1mL提取液一,冰浴匀浆后离心,取0.8mL上清后加0.15mL提取液二,离心取上清后用蒸馏水稀释两倍,按照测定步骤操作,使用1mL比色皿测得计算ΔA测定=A测定管-A对照管=0.972-0.092= 0.880,根据标准曲线y=1.365x-0.0041,R2=0.9999,计算x=0.6477,按样本质量计算含量得:
L-LA含量(μmol/g 质量)= 1.1875×x÷W×稀释倍数(2)=10.493 μmol/g质量。
2、 取0.1063g红薯根加入1mL提取液一,冰浴匀浆后离心,取0.8mL上清后加0.15mL提取液二,离心取上清,之后按照测定步骤操作,使用1mL比色皿测得计算ΔΔA测定=A测定管-A对照管=0.124-0.099=0.025,根据标准曲线y=1.365x-0.0041,R2=0.9999,计算x=0.0213,按样本质量计算含量得:
L-LA含量(μmol/g 质量)=1.1875×x÷W=0.2382μmol/g质量。
3、 取100μL羊血清加入1mL提取液一,离心,取0.8mL上清后加0.15mL提取液二,离心取上清,之后按照测定步骤操作,使用1mL比色皿测得计算ΔA测定=A测定管-A对照管=0.587-0.095=0.492,根据标准曲线y=1.365x-0.0041,R2=0.9999,计算x=0.3634,按照液体体积计算含量得:
L-LA含量(μmol/mL)=13.0625×x=4.748 μmol/mL。
参考文献:
Eolbergrová J, MacMillan V, Siesjö B K. The effect of moderate and marked hypercapnia upon the energy state and upon the cytoplasmic NADH/NAD+ ratio of the rat brain[J]. Journal of neurochemistry, 1972, 19(11): 2497-2505.
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